| 致谢 | 第1-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-20页 |
| ·植物组织培养的研究简史 | 第10-11页 |
| ·植物组织培养中器官发生的一般规律 | 第11-12页 |
| ·植物组织培养的器官发生中生长素的作用 | 第12-15页 |
| ·植物组织培养中器官发生的分子基础 | 第15-17页 |
| ·植物细胞脱分化中的细胞酸碱变化 | 第17-18页 |
| ·基因表达调控网络的构建 | 第18-20页 |
| 第二章 立题依据与研究思路 | 第20-22页 |
| ·立题依据 | 第20页 |
| ·研究思路 | 第20-22页 |
| ·材料选择 | 第21页 |
| ·研究思路 | 第21-22页 |
| 第三章 小麦成熟胚脱分化的组织定位 | 第22-31页 |
| ·材料与方法 | 第22-24页 |
| ·供试材料 | 第22页 |
| ·试剂配制 | 第22页 |
| ·实验方法 | 第22-24页 |
| ·实验结果 | 第24-29页 |
| ·2,4-D对小麦成熟胚离体培养的影响 | 第24页 |
| ·小麦成熟胚脱分化过程的显微观察 | 第24-26页 |
| ·小麦成熟胚脱分化过程的电镜观察 | 第26-29页 |
| ·小结 | 第29-31页 |
| ·小麦成熟胚脱分化的组织定位及意义 | 第29页 |
| ·小麦成熟胚脱分化的过程划分及意义 | 第29-31页 |
| 第四章 小麦成熟胚脱分化中基因表达分析 | 第31-81页 |
| ·材料与方法 | 第32-42页 |
| ·实验系统和试剂 | 第32-35页 |
| ·材料制备 | 第35页 |
| ·Affymetrix表达谱芯片实验操作 | 第35-41页 |
| ·荧光定量PCR | 第41-42页 |
| ·结果与分析 | 第42-79页 |
| ·参与小麦成熟胚脱分化过程的相关基因 | 第42-44页 |
| ·小麦成熟胚脱分化过程相关基因的表达变化 | 第44-78页 |
| ·小麦成熟脱分化中PM H+-ATPase基因的荧光定量PCR检测 | 第78-79页 |
| ·小结 | 第79-81页 |
| ·涉及许多生物学过程 | 第79-80页 |
| ·相关基因表达复杂 | 第80-81页 |
| 第五章 小麦PM H+-ATPase基因克隆及表达蛋白的生物信息学分析 | 第81-100页 |
| ·材料与方法 | 第81-87页 |
| ·试验材料 | 第81页 |
| ·PM H+-ATPase基因克隆 | 第81-87页 |
| ·PM H+-ATPase生物信息学分析 | 第87页 |
| ·结果与分析 | 第87-98页 |
| ·小麦PM H+-ATPase的基因克隆及结构分析 | 第87-94页 |
| ·小麦H+-ATPase结构分析 | 第94-98页 |
| ·结论与讨论 | 第98-100页 |
| ·PM H+-ATPase基因结构的复杂性 | 第98页 |
| ·PM H+-ATPase结构和功能的复杂性 | 第98-99页 |
| ·TAIL-PCR在基因的侧翼序列克隆中的优点 | 第99-100页 |
| 第六章 小麦成熟胚组织培养的利用潜力 | 第100-111页 |
| ·材料与方法 | 第100-103页 |
| ·试验材料 | 第100页 |
| ·实验试剂 | 第100-101页 |
| ·实验方法 | 第101-103页 |
| ·结果与分析 | 第103-109页 |
| ·小麦愈伤组织高效再生体系的建立 | 第103-107页 |
| ·小麦愈伤组织高效再生体系的生理基础 | 第107-109页 |
| ·结论与讨论 | 第109-111页 |
| ·基因型对成熟胚脱分化和分化的影响 | 第109页 |
| ·材料处理方式对脱分化和分化的影响 | 第109-110页 |
| ·2,4-D对脱分化和分化的影响 | 第110页 |
| ·草酸盐氧化酶对愈伤组织分化的影响 | 第110页 |
| ·PM H+ATPase对成熟胚脱分化和分化的影响 | 第110-111页 |
| 第七章 结语 | 第111-116页 |
| ·本文主要结论 | 第111-115页 |
| ·本文创新之处 | 第115页 |
| ·本文不足之处 | 第115-116页 |
| 参考文献 | 第116-125页 |
| ABSTRACT | 第125-128页 |
| 附录:攻读博士学位期间发表相关论文 | 第128页 |
