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白菜花粉发育相关基因BcMF3和BcMF4的转基因功能验证

缩写词第1-13页
摘要第13-15页
Abstract第15-18页
前言第18-20页
1 文献综述第20-36页
 1.1 植物果胶甲酯酶的研究第20-24页
  1.1.1 植物果胶甲酯酶的结构模型第20-21页
  1.1.2 植物果胶甲酯酶的作用方式第21-23页
  1.1.3 花粉特异果胶甲酯酶基因的分离第23-24页
 1.2 植物多聚半乳糖醛酸酶抑制蛋白的研究第24-28页
  1.2.1 多聚半乳糖醛酸酶抑制蛋白的结构与分布第25-26页
  1.2.2 多聚半乳糖醛酸酶抑制蛋白基因第26-27页
  1.2.3 多聚半乳糖醛酸酶抑制蛋白与花粉发育第27-28页
 1.3 RNA干涉研究进展第28-36页
  1.3.1 RNA干涉现象的发现及其特点第28-29页
  1.3.2 RNA干涉的作用机理第29-31页
   1.3.2.1 小片段dsRNA与基因沉默第29-30页
   1.3.2.2 RNA干涉所需的基因第30-31页
   1.3.2.3 RNA干涉的可能机制第31页
  1.3.3 RNA干涉技术第31-33页
   1.3.3.1 编码区RNA干涉技术第32页
   1.3.3.2 启动子区KNA干涉技术第32-33页
  1.3.4 RNA干涉的应用第33-36页
   1.3.4.1 功能基因组分析的应用第33-34页
   1.3.4.2 生物遗传改良中的应用第34页
   1.3.4.3 有害基因表达的抑制第34-36页
2 BcMF3和BcMF4基因表达的Northern杂交分析第36-46页
 2.1 材料与方法第36-41页
  2.1.1 实验材料第36-37页
  2.1.2 RNA的分离及检测第37-38页
  2.1.3 cDNA的合成第38-39页
   2.1.3.1 第一链cDNA的合成第38页
   2.1.3.2 cDNA的LD-PCR扩增第38-39页
  2.1.4 Northern杂交第39-41页
   2.1.4.1 RNA印迹第39-40页
   2.1.4.2 探针的制备第40页
   2.1.4.3 杂交反应及洗膜第40-41页
 2.2 结果与分析第41-43页
  2.2.1 RNA的提取与cDNA的合成第41-42页
  2.2.2 BcMF3基因的表达特征第42-43页
  2.2.3 BcMF4基因的表达特征第43页
 2.3 讨论第43-46页
3 BcMF3和BcMF4的基因沉默植物表达载体的构建第46-60页
 3.1 材料与方法第46-54页
  3.1.1 总体策略第46-47页
  3.1.2 菌株、质粒和试剂第47页
  3.1.3 目的片断的克隆第47-52页
   3.1.3.1 质粒DNA的提取第47-48页
   3.1.3.2 反义BcMF3基因片段的克隆第48-49页
   3.1.3.3 反义BcMF4基因片段的克隆第49-50页
   3.1.3.4 正义BcMF3基因片段的克隆第50-51页
   3.1.3.5 正义BcMF4基因片段的克隆第51-52页
  3.1.4 CaMV35S启动子的BcMF3和BcMF4基因沉默表达载体的构建第52-53页
   3.1.4.1 反义RNA表达载体的构建第52-53页
   3.1.4.2 双价反义RNA表达载体的构建第53页
   3.1.4.3 RNA干涉表达载体的构建第53页
  3.1.5 A9启动子的BcMF3和BcMF4基因沉默表达载体的构建第53-54页
   3.1.5.1 A9启动子的克隆第53页
   3.1.5.2 A9启动子的表达载体的构建第53-54页
 3.2 结果与分析第54-57页
  3.2.1 目的片断的获得第54页
  3.2.2 基因沉默的植物表达载体的获得第54-57页
   3.2.2.1 CaMV35S启动子的表达载体的获得第55-56页
   3.2.2.2 A9启动子的表达载体的获得第56-57页
 3.3 讨论第57-60页
4 BcMF3和BcMF4的基因沉默植物表达载体对拟南芥的转化第60-68页
 4.1 材料与方法第60-63页
  4.1.1 植物材料、菌株及抗生素第60页
  4.1.2 Floral dip法转化植株第60-61页
   4.1.2.1 拟南芥的培养第60页
   4.1.2.2 农杆菌的培养第60-61页
   4.1.2.3 Floral dip法转化植株第61页
  4.1.3 转化苗的抗生素筛选第61页
  4.1.4 拟南芥基因组DNA的提取第61页
  4.1.5 拟南芥中BcMF3和BcMF4基因同源片断的PCR扩增第61页
  4.1.6 抗性转化植株的分子鉴定第61-63页
   4.1.6.1 抗性转化植株的PCR检测第61-62页
   4.1.6.2 抗性转化植株的Southern杂交检测第62-63页
 4.2 结果与分析第63-65页
  4.2.1 野生型拟南芥中BcMF3和BcMF4基因的同源片断第63页
  4.2.2 抗性转化植株的获得第63-64页
  4.2.3 抗性转化植株的PCR分析第64页
  4.2.4 抗性转化植株的Southern杂交分析第64-65页
 4.3 讨论第65-68页
5 BcMF3和BcMF4的基因沉默植物表达载体对菜心的转化第68-78页
 5.1 材料与方法第68-70页
  5.1.1 植物材料、菌株及抗生素第68页
  5.1.2 菜心无菌苗的培养第68-69页
  5.1.3 菜心的遗传转化第69-70页
   5.1.3.1 预培养第69页
   5.1.3.2 浸染农杆菌第69页
   5.1.3.3 共培养第69页
   5.1.3.4 分化培养第69页
   5.1.3.5 生根培养第69-70页
  5.1.4 菜心基因组DNA的提取第70页
  5.1.5 菜心中BcMF3和BcMF4基因同源片断的PCR扩增第70页
  5.1.6 抗性转化植株的分子鉴定第70页
   5.1.6.1 抗性转化植株的PCR检测第70页
   5.1.6.2 抗性转化植株的Southern杂交检测第70页
 5.2 结果与分析第70-75页
  5.2.1 菜心中BcMF3和BcMF4基因的同源片断第70-71页
  5.2.2 抗性转化植株的获得第71-72页
  5.2.3 抗性转化植株的PCR分析第72-73页
  5.2.4 抗性转化植株的Southern杂交分析第73-75页
 5.3 讨论第75-78页
6 BcMF3和BcMF4的基因沉默转基因植株的育性相关性状分析第78-92页
 6.1 材料与方法第78-80页
  6.1.1 植物材料、仪器及试剂第78页
  6.1.2 花器官的形态学观察第78页
  6.1.3 花粉形态的扫描电镜观察第78-79页
  6.1.4 花粉的离体萌发第79页
  6.1.5 花粉活力的检测第79页
  6.1.6 花粉在雌蕊中的生长观察第79页
  6.1.7 果胶甲酯酶活性的测定第79-80页
   6.1.7.1 样品准备第80页
   6.1.7.2 酶浓度测定第80页
   6.1.7.3 酶活性测定第80页
 6.2 结果与分析第80-87页
  6.2.1 转基因植株的花器官形态第80-81页
  6.2.2 转基因植株的花粉形态第81-82页
   6.2.2.1 拟南芥转基因植株的花粉形态第81页
   6.2.2.2 菜心转基因植株的花粉形态第81-82页
  6.2.3 转基因植株花粉的离体萌发第82-84页
   6.2.3.1 拟南芥转基因植株的花粉离体萌发第82-83页
   6.2.3.2 菜心转基因植株的花粉离体萌发第83-84页
  6.2.4 菜心转基因植株的花粉活力第84-85页
  6.2.5 转基因植株花粉管在雌蕊中的生长第85-86页
  6.2.6 不同载体转化菜心的沉默效率第86页
  6.2.7 菜心转基因植株果胶甲酯酶的活性第86-87页
 6.3 讨论第87-92页
  6.3.1 BcMF3和BcMF4基因与雄性不育第87-88页
  6.3.2 启动子类型对沉默BcMF3和BcMF4基因的影响第88页
  6.3.3 载体类型对沉默BcMF3和BcMF4基因的影响第88-89页
  6.3.4 果胶甲酯酶与花粉发育第89-90页
  6.3.5 多聚半乳糖醛酸酶抑制蛋白与花粉发育第90-92页
结论第92-94页
参考文献第94-108页
博士期间发表的论文第108页

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