| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 1 引言 | 第9-11页 |
| 2 材料和方法 | 第11-17页 |
| ·大豆子叶节遗传转化体系的优化 | 第11-14页 |
| ·植物材料 | 第11页 |
| ·农杆菌菌株和质粒 | 第11页 |
| ·试验过程中使用的培养基 | 第11页 |
| ·试验方法 | 第11-12页 |
| ·转化植株的GUS 活性测定 | 第12页 |
| ·GUS 基因T0 代转化植株的除草剂筛选 | 第12-13页 |
| ·GUS 基因转化植株的PCR 检测 | 第13-14页 |
| ·农杆菌介导的AtNHX5 大豆子叶节的遗传转化 | 第14-17页 |
| ·植物材料 | 第14页 |
| ·试验方法 | 第14页 |
| ·双层生根培养基的制备 | 第14-15页 |
| ·AtNHX5 基因转化植株的PCR 检测 | 第15-16页 |
| ·AtNHX5 基因T1 代转化植株的除草剂筛选 | 第16页 |
| ·AtNHX5 基因T1 代转化植株的盐胁迫处理 | 第16-17页 |
| 3 结果与分析 | 第17-28页 |
| ·大豆子叶节遗传转化体系的优化 | 第17-24页 |
| ·萌发培养基对大豆子叶节诱导的影响 | 第17-18页 |
| ·萌发天数对大豆子叶节丛生芽诱导的影响 | 第18页 |
| ·预处理温度对大豆子叶节平均丛生芽数的影响 | 第18-19页 |
| ·超声波处理时间对大豆子叶节平均丛生芽数的影响 | 第19-20页 |
| ·抗氧化剂对大豆子叶节平均丛生芽数的影响 | 第20-21页 |
| ·GUS 基因转化植株的检测 | 第21-24页 |
| ·农杆菌介导的AtNHX5 大豆子叶节的遗传转化 | 第24-28页 |
| ·新型培养方式对大豆子叶节遗传转化的影响 | 第24-25页 |
| ·AtNHX5 基因转化植株的PCR 检测 | 第25-27页 |
| ·AtNHX5 基因转化植株T1 代幼苗耐盐性检测 | 第27-28页 |
| 4 讨论 | 第28-31页 |
| 5 结论 | 第31-32页 |
| 参考文献 | 第32-37页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第37-38页 |
| 作者简介 | 第38-39页 |
| 致谢 | 第39-40页 |