| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-8页 |
| 缩略词表 | 第8-10页 |
| 引言 | 第10-16页 |
| 第一部分 研究背景 | 第10-13页 |
| 1、动脉钙化 | 第10页 |
| 2、动脉钙化机制 | 第10-12页 |
| 3、炎症小体 | 第12-13页 |
| 第二部分 nalp3炎症小体参与钙化研究的重要性 | 第13-14页 |
| 第三部分 研究目的、方法和意义 | 第14-16页 |
| 材料与方法 | 第16-25页 |
| 一、材料 | 第16-20页 |
| 二、方法 | 第20-25页 |
| 1. 原代细胞分离与培养 | 第20-21页 |
| 2. 细胞钙化模型的建立 | 第21页 |
| 3. 大鼠动物模型的建立 | 第21页 |
| 4. ALP测定 | 第21页 |
| 5. 茜素红钙化染色 | 第21页 |
| 6. HE染色 | 第21-22页 |
| 7. RNA提取及RT-PCR | 第22-23页 |
| 8. 免疫荧光 | 第23页 |
| 9. ELISA法检测i1-1β(试剂盒) | 第23-24页 |
| 10. 免疫印迹检测 | 第24-25页 |
| 结果 | 第25-35页 |
| 一、VSMC的原代细胞培养 | 第25页 |
| 二、钙化模型的建立 | 第25-27页 |
| 三、nalp3炎症小体在大鼠钙化模型中被激活 | 第27-29页 |
| 1. 细胞钙化模型中 | 第27-28页 |
| 2. 大鼠动物钙化模型中 | 第28-29页 |
| 四、nalp3炎症小体在人钙化模型中被激活 | 第29-32页 |
| 五、nalp3通过调节OPG/RANKL来促进钙化 | 第32-34页 |
| 六、临床钙化病理中nalp3炎症小体被激活 | 第34-35页 |
| 讨论 | 第35-38页 |
| 一、细胞原代培养 | 第35页 |
| 二、钙化模型建立 | 第35-36页 |
| 1. 细胞模型 | 第35-36页 |
| 2. 动物模型 | 第36页 |
| 三、nalp3炎症小体在钙化中被激活 | 第36-37页 |
| 四、nalp3炎症小体通过OPG/RANKL调节钙化 | 第37-38页 |
| 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-44页 |
| 硕士期间发表的论文综述(第一署名) | 第44-45页 |
| 致谢 | 第45-46页 |