| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-15页 |
| 英文缩略词 | 第15-16页 |
| 第一部分 IBMIR分子成像靶向超声造影剂制备及其检测 | 第16-27页 |
| 前言 | 第16-17页 |
| 1 资料与方法 | 第17-20页 |
| ·主要试剂 | 第17页 |
| ·主要仪器 | 第17页 |
| ·靶向超声造影剂的制备及纯化 | 第17-18页 |
| ·KGDS-TUCA一般特性的检测 | 第18页 |
| ·KGDS-TUCA靶向结合效率及靶向性检测 | 第18-19页 |
| ·KGDS-TUCA稳定性及造影增强实验 | 第19-20页 |
| ·统计学分析 | 第20页 |
| 2 结果 | 第20-23页 |
| ·KGDS靶向超声造影剂的一般特性 | 第20-21页 |
| ·KGDS-TUCA靶向性检测 | 第21-23页 |
| ·KGDS-TUCA稳定性检测 | 第23页 |
| 3 讨论 | 第23-26页 |
| 4 小结 | 第26-27页 |
| 第二部分 猪胰岛细胞异种移植激活立即经血液介导的炎症反应的体外模型构建 | 第27-34页 |
| 前言 | 第27页 |
| 1 资料和方法 | 第27-29页 |
| ·仪器材料 | 第27-28页 |
| ·猪胰岛细胞的分离纯化 | 第28页 |
| ·体外循环管道Tubing Loops内表面肝素化 | 第28页 |
| ·温控摇床 | 第28页 |
| ·研究样本分组 | 第28-29页 |
| ·检测项目 | 第29页 |
| ·统计学分析 | 第29页 |
| 2 结果 | 第29-32页 |
| ·Tubing Loops内不同浓度肝素对未加入胰岛的新鲜全血影响 | 第29-30页 |
| ·摇摆60分钟实验各组血细胞、血浆指标结果 | 第30页 |
| ·不同时间点各组血栓形成重量(g)结果 | 第30-31页 |
| ·病理组织学结果 | 第31-32页 |
| 3 讨论 | 第32-33页 |
| 4 小结 | 第33-34页 |
| 第三部分 体外IBMIR的超声分子显像 | 第34-44页 |
| 背景 | 第34页 |
| 1 资料与方法 | 第34-37页 |
| ·主要试剂 | 第34页 |
| ·主要仪器 | 第34-35页 |
| ·胰岛细胞分离及纯化 | 第35页 |
| ·KGDS靶向超声造影剂制备及纯化 | 第35页 |
| ·体外IBMIR模型 | 第35页 |
| ·实验方案 | 第35-36页 |
| ·检测项目 | 第36页 |
| ·病理组织学检测 | 第36页 |
| ·统计学分析 | 第36-37页 |
| 2 结果 | 第37-41页 |
| ·各实验组超声显像结果 | 第37-39页 |
| ·超声检测出血凝块的时间及相应血凝块重量 | 第39页 |
| ·C组血细胞、血浆指标检测结果 | 第39-40页 |
| ·病理学结果 | 第40-41页 |
| 3 讨论 | 第41-43页 |
| 4 小结 | 第43-44页 |
| 第四部分 体内IBMIR的超声分子显像 | 第44-61页 |
| 前言 | 第44页 |
| 1 资料与方法 | 第44-49页 |
| ·实验试剂 | 第45页 |
| ·实验仪器 | 第45页 |
| ·靶向超声造影剂制备 | 第45-46页 |
| ·胰岛分离纯化与活性检测 | 第46页 |
| ·海藻酸钠微囊制备及检测 | 第46页 |
| ·动物准备 | 第46页 |
| ·实验方案 | 第46-47页 |
| ·血液学检测 | 第47-48页 |
| ·组织病理学检测 | 第48页 |
| ·统计学分析 | 第48-49页 |
| 2 结果 | 第49-54页 |
| ·超声造影结果 | 第49-50页 |
| ·实验各组造影后30分钟,取血检测血液指标 | 第50-53页 |
| ·病理结果 | 第53-54页 |
| 3 讨论 | 第54-59页 |
| ·实验各组IBMIR相关血液学指标的改变的意义 | 第55-56页 |
| ·KGDS-TUCA靶向超声造影剂显示体内IBMIR的可行性 | 第56-58页 |
| ·KGDS-TUCA显示体内IBMIR的敏感性,即空间分辨率与时间分辨率 | 第58-59页 |
| 4 小结 | 第59-61页 |
| 总结 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-70页 |
| 综述 (一) | 第70-88页 |
| 综述 (二) | 第88-104页 |
| 致谢 | 第104-105页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第105页 |
