摘要Ⅰ | 第1-9页 |
ABSTRACT Ⅰ | 第9-10页 |
摘要Ⅱ | 第10-12页 |
ABSTRACT Ⅱ | 第12-13页 |
缩略词表 | 第13-14页 |
第一部分 高糖对脑微血管内皮细胞抗氧化系统及ATP水平的影响 | 第14-35页 |
1. 引言 | 第14-16页 |
2. 材料和方法 | 第16-22页 |
·材料 | 第16-18页 |
·细胞系 | 第16页 |
·试剂 | 第16-18页 |
·试剂来源 | 第16-17页 |
·试剂配方 | 第17-18页 |
·实验仪器 | 第18页 |
·方法 | 第18-22页 |
·细胞培养 | 第18-19页 |
·细胞RNA提取与纯化 | 第19页 |
·逆转录与半定量PCR | 第19-20页 |
·细胞活力检测 | 第20-21页 |
·细胞内氧自由基检测 | 第21页 |
·Western免疫印迹 | 第21页 |
·ATP水平检测 | 第21-22页 |
·统计学分析 | 第22页 |
3. 实验结果 | 第22-32页 |
·高糖刺激诱导脑微血管内皮细胞SOD1及SOD2基因表达的增高 | 第22-24页 |
·高糖抑制脑微血管内皮细胞SOD2蛋白水平的升高 | 第24-28页 |
·高糖诱导解耦联蛋白mRNA水平增加 | 第28-30页 |
·高糖导致脑微血管内皮细胞ATP合成减少 | 第30-32页 |
4. 讨论 | 第32-35页 |
第二部分 白藜芦醇对高糖下脑微血管内皮细胞NADPH氧化酶的影响及其干预机制 | 第35-57页 |
1. 引言 | 第35-37页 |
2. 材料和方法 | 第37-43页 |
·材料 | 第37-40页 |
·细胞系 | 第37页 |
·试剂 | 第37-39页 |
·试剂来源 | 第37-38页 |
·试剂配方 | 第38-39页 |
·实验仪器 | 第39-40页 |
·方法 | 第40-43页 |
·细胞培养 | 第40页 |
·细胞RNA提取与纯化 | 第40-41页 |
·逆转录和半定量PCR | 第41页 |
·细胞活力检测 | 第41-42页 |
·细胞内氧自由基检测 | 第42页 |
·细胞凋亡检测 | 第42页 |
·Western免疫印迹 | 第42-43页 |
·NADPH氧化酶活性检测 | 第43页 |
·统计学分析 | 第43页 |
3. 实验结果 | 第43-53页 |
·白藜芦醇抑制高糖刺激的脑微血管内皮细胞内NADPH氧化酶活性增高和ROS生产增加 | 第43-46页 |
·白藜芦醇抑制高糖导致的脑微血管内皮细胞活性下降和凋亡 | 第46-49页 |
·白藜芦醇降低高糖诱导的NADPH氧化酶NOX1亚基基因表达 | 第49-51页 |
·白藜芦醇通过抑制NF-kB激活来抑制高糖条件下NOX1蛋白水平的增加 | 第51-53页 |
4. 讨论 | 第53-57页 |
综述 | 第57-64页 |
参考文献 | 第64-72页 |
发表论文 | 第72-73页 |
致谢 | 第73-74页 |