| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 主要英文缩略词索引 | 第13-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-26页 |
| 1.1 AS概述 | 第16-18页 |
| 1.1.1 AS的病理进程概述 | 第16页 |
| 1.1.2 自身免疫病与AS | 第16-17页 |
| 1.1.3 血管内皮细胞与AS | 第17-18页 |
| 1.2 oxLDL/β2GPI/anti-β2GPI复合物 | 第18-21页 |
| 1.2.1 oxLDL与AS | 第18-19页 |
| 1.2.2 β2GPI与AS | 第19-20页 |
| 1.2.3 抗β2GPI抗体与AS | 第20页 |
| 1.2.4 oxLDL/β2GPI/anti-β2GPI复合物与AS | 第20-21页 |
| 1.3 TNF-α、ICAM-1、VCAM-1、vWF与AS | 第21-23页 |
| 1.3.1 TNF-α | 第21页 |
| 1.3.2 ICAM-1和VCAM- | 第21-22页 |
| 1.3.3 vWF | 第22-23页 |
| 1.4 TLR4信号通路与AS | 第23-24页 |
| 1.4.1 Toll样受体概述 | 第23页 |
| 1.4.2 TLR4及其信号通路 | 第23-24页 |
| 1.4.3 TLR4信号通路与AS | 第24页 |
| 1.5 结语 | 第24-26页 |
| 第二章 研究目的、方法、方案设计及意义 | 第26-28页 |
| 2.1 研究目的 | 第26页 |
| 2.2 研究方法和技术 | 第26页 |
| 2.3 实验方案的设计 | 第26-27页 |
| 2.4 研究意义 | 第27-28页 |
| 第三章 材料与方法 | 第28-38页 |
| 3.1 实验材料 | 第28-31页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第28-29页 |
| 3.1.2 其他试剂 | 第29页 |
| 3.1.3 主要溶液 | 第29-30页 |
| 3.1.4 主要仪器 | 第30-31页 |
| 3.2 实验方法 | 第31-38页 |
| 3.2.1 人脐静脉内皮细胞株(HUVEC)的培养与处理 | 第31-32页 |
| 3.2.2 细胞总RNA的提取及逆转录 | 第32-33页 |
| 3.2.3 实时荧光定量PCR | 第33-34页 |
| 3.2.4 细胞总蛋白的提取 | 第34-35页 |
| 3.2.5 蛋白免疫印迹(Westernblot)分析 | 第35-36页 |
| 3.2.6 ELISA检测细胞培养上清TNF-α的蛋白含量 | 第36-37页 |
| 3.2.7 细胞黏附试验检测HUVEC的黏附能力 | 第37页 |
| 3.2.8 统计学分析 | 第37-38页 |
| 第四章 结果 | 第38-52页 |
| 4.1 oxLDL/β2GPI/anti-β2GPI复合物促进HUVEC炎性分子TNF-α的表达 | 第38-39页 |
| 4.2 oxLDL/β2GPI/anti-β2GPI复合物促进HUVEC黏附分子ICAM-1、VCAM-1的表达 | 第39-40页 |
| 4.3 oxLDL/β2GPI/anti-β2GPI复合物促进HUVEC血栓相关分子vWF的表达 | 第40-42页 |
| 4.4 TLR4在oxLDL/β2GPI/anti-β2GPI复合物促进HUVECAS相关活性分子表达的过程中发挥重要作用 | 第42-44页 |
| 4.5 oxLDL/β2GPI/anti-β2GPI复合物通过p38MAPK信号分子刺激HUVEC表达AS相关活性分子 | 第44-46页 |
| 4.6 oxLDL/β2GPI/anti-β2GPI复合物促进HUVEC对人单核细胞株(THP-1)的黏附以及TLR4和p38MAPK信号通路在该过程中的作用 | 第46-48页 |
| 4.7 讨论 | 第48-52页 |
| 第五章 主要结论及展望 | 第52-53页 |
| 5.1 主要结论 | 第52页 |
| 5.2 展望 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-63页 |
| 致谢 | 第63-65页 |
| 攻读硕士学位期间发表的文章及参加的会议 | 第65页 |
| 一 攻读硕士学位期间发表的文章 | 第65页 |
| 二 攻读硕士学位期间参加的学术会议 | 第65页 |
