摘要 | 第9-11页 |
ABSTRACT | 第11-13页 |
第一章 绪论 | 第14-27页 |
1.1 引言 | 第14页 |
1.2 红曲色素概述 | 第14-22页 |
1.2.1 红曲色素的组成、结构及性质 | 第14-18页 |
1.2.2 红曲色素衍生物 | 第18页 |
1.2.3 水溶性红曲色素 | 第18-19页 |
1.2.4 红曲及红曲色素的生产 | 第19-21页 |
1.2.5 桔霉素 | 第21页 |
1.2.6 红曲色素的应用 | 第21-22页 |
1.3 红曲色素的提取分离纯化 | 第22-24页 |
1.3.1 红曲色素的提取方法 | 第22-23页 |
1.3.2 红曲色素的分离方法 | 第23-24页 |
1.3.2.1 薄层分离法 | 第23页 |
1.3.2.2 高效液相法 | 第23-24页 |
1.3.2.3 高速逆流色谱法 | 第24页 |
1.4 红曲残渣的开发现状 | 第24-25页 |
1.5 本课题的研究内容 | 第25页 |
1.6 本课题的研究目的及意义 | 第25-27页 |
第二章 红曲残渣中主要成分的分析 | 第27-32页 |
2.1 引言 | 第27页 |
2.2 试验材料与仪器 | 第27页 |
2.3 试验方法 | 第27-28页 |
2.3.1 红曲残渣主要成分的分析 | 第27-28页 |
2.3.1.1 粗蛋白含量的测定 | 第27页 |
2.3.1.2 粗多糖含量的测定 | 第27页 |
2.3.1.3 粗脂肪含量的测定 | 第27-28页 |
2.3.2 残渣含水量及残余色价的测定 | 第28页 |
2.3.2.1 残渣含水量测定 | 第28页 |
2.3.2.2 残渣色价的测定 | 第28页 |
2.4 结果与讨论 | 第28-31页 |
2.4.1 粗蛋白含量 | 第29页 |
2.4.2 粗多糖含量 | 第29页 |
2.4.3 粗脂肪含量 | 第29页 |
2.4.4 红曲残渣含水量 | 第29-30页 |
2.4.5 残余色价 | 第30-31页 |
2.5 小结 | 第31-32页 |
第三章 红曲霉菌丝体残渣中的色素提取工艺研究 | 第32-62页 |
3.1 引言 | 第32页 |
3.2 试验材料与仪器 | 第32-33页 |
3.2.1 试验材料 | 第32页 |
3.2.2 仪器 | 第32-33页 |
3.3 试验方法 | 第33-37页 |
3.3.1 蛋白酶酶活的测定 | 第33页 |
3.3.2 红曲霉菌丝体残渣中色素提取 | 第33-34页 |
3.3.3 菌丝体渣的含水量对色素提取的影响 | 第34页 |
3.3.4 菌丝体渣的细度对色素提取的影响 | 第34页 |
3.3.5 菌丝体残渣中醇溶性色素的提取 | 第34-35页 |
3.3.6 脱脂的方式对色素提取的影响 | 第35页 |
3.3.7 酸沉淀对色素提取的影响 | 第35页 |
3.3.8 载体对产品稳定性的影响 | 第35页 |
3.3.9 色素液的色价测定 | 第35页 |
3.3.10 色素相对收率计算 | 第35-36页 |
3.3.11 产品相对提取率计算 | 第36页 |
3.3.12 产品色价测定 | 第36页 |
3.3.13 产品中粗蛋白含量的测定 | 第36页 |
3.3.14 单因素试验 | 第36页 |
3.3.15 色素释放动力学测定 | 第36-37页 |
3.3.16 响应面优化色素提取工艺 | 第37页 |
3.4 结果与讨论 | 第37-60页 |
3.4.1 蛋白酶活力的测定 | 第37-38页 |
3.4.2 菌丝体残渣中色素提取工艺研究 | 第38-43页 |
3.4.2.1 碱解对菌丝提残渣色素的影响 | 第38-39页 |
3.4.2.2 酶解对色素提取的影响 | 第39页 |
3.4.2.3 菌丝体渣的状态对色素提取的影响 | 第39-40页 |
3.4.2.4 酸沉淀对色素提取的影响 | 第40-41页 |
3.4.2.5 酶法提取的产品与醇提产品比较 | 第41-42页 |
3.4.2.6 载体对产品稳定性的影响 | 第42-43页 |
3.4.3 单因素试验结果分析 | 第43-53页 |
3.4.3.1 NaOH溶液浓度对色素提取的影响 | 第43-44页 |
3.4.3.2 碱解时间比对色素提取的影响 | 第44-45页 |
3.4.3.3 蛋白变性时间比对色素提取的影响 | 第45-46页 |
3.4.3.4 酶解pH对色素提取的影响 | 第46-47页 |
3.4.3.5 酶解温度对色素提取的影响 | 第47-48页 |
3.4.3.6 中性蛋白酶的添加量对色素提取的影响 | 第48-49页 |
3.4.3.7 料液比对色素提取的影响 | 第49-50页 |
3.4.3.8 酶解时间对色素提取的影响 | 第50-51页 |
3.4.3.9 脂肪酶的添加量对色素提取的影响 | 第51-52页 |
3.4.3.10 碱浸提对色素提取的影响 | 第52-53页 |
3.4.3.11 酸沉淀pH值的确定 | 第53页 |
3.4.4 响应面优化色素提取工艺 | 第53-59页 |
3.4.4.1 Box-Behnken设计与结果 | 第53-55页 |
3.4.4.2 方差分析及显著性检验 | 第55-56页 |
3.4.4.3 响应面分析与优化 | 第56-59页 |
3.4.4.4 模型验证实验 | 第59页 |
3.4.5 最终产品的得率及色价 | 第59-60页 |
3.5 小结 | 第60-62页 |
第四章 酶法分离提取红曲米渣中色素 | 第62-69页 |
4.1 引言 | 第62页 |
4.2 试验材料及试剂 | 第62-63页 |
4.2.1 试验材料 | 第62页 |
4.2.2 试验仪器 | 第62页 |
4.2.3 试验试剂 | 第62-63页 |
4.3 试验方法 | 第63-64页 |
4.3.1 红曲米渣中色素的提取 | 第63页 |
4.3.2 色素提取过程中相关指标的测定 | 第63页 |
4.3.3 可溶性糖含量的测定 | 第63-64页 |
4.3.4 产品中粗蛋白含量的测定 | 第64页 |
4.4 结果与讨论 | 第64-68页 |
4.4.1 红曲米渣中色素提取工艺研究 | 第64-67页 |
4.4.1.1 碱解对红曲米渣中色素提取的影响 | 第64-65页 |
4.4.1.2 红曲米渣颗粒细度对色素提取的影响 | 第65页 |
4.4.1.3 酶的种类对色素提取的影响 | 第65-66页 |
4.4.1.4 中性蛋白酶的添加量对色素提取的影响 | 第66页 |
4.4.1.5 碱浸提对色素提取的影响 | 第66页 |
4.4.1.6 酸沉淀对色素回收的影响 | 第66-67页 |
4.4.2 产品得率、色价及成分分析 | 第67页 |
4.4.3 色素提取过程的废水循环 | 第67-68页 |
4.5 小结 | 第68-69页 |
第五章 工业化试验 | 第69-74页 |
5.1 试验材料与仪器 | 第69页 |
5.1.1 试验材料 | 第69页 |
5.1.2 试验仪器 | 第69页 |
5.2 试验方法 | 第69-70页 |
5.2.1 色素提取过程相关指标的测定及计算 | 第69-70页 |
5.2.2 色素的提取 | 第70页 |
5.3 结果与讨论 | 第70-73页 |
5.3.1 工业试验过程图 | 第70-71页 |
5.3.2 色素提取过程相对收率分析 | 第71-73页 |
5.4 小结 | 第73-74页 |
第六章 红曲色素的分离及稳定性研究 | 第74-82页 |
6.1 试验材料与仪器 | 第74-75页 |
6.1.1 试验材料 | 第74页 |
6.1.2 仪器 | 第74-75页 |
6.2 试验方法 | 第75-76页 |
6.2.1 薄层色谱分离 | 第75页 |
6.2.1.1 样品溶液的制备 | 第75页 |
6.2.1.2 薄层色谱溶剂系统的选择 | 第75页 |
6.2.2 高效液相色谱分离 | 第75页 |
6.2.2.1 样品处理 | 第75页 |
6.2.2.2 HPLC分离条件 | 第75页 |
6.2.3 紫外光照射对红曲色素稳定性影响 | 第75页 |
6.2.4 红曲色素热稳定性分析 | 第75-76页 |
6.3 结果与讨论 | 第76-80页 |
6.3.1 TLC分离溶剂系统的选择 | 第76页 |
6.3.2 TLC分离条件的优化 | 第76-78页 |
6.3.3 桔霉素检测分析 | 第78页 |
6.3.4 HPLC分离结果 | 第78页 |
6.3.5 红曲色素紫外照光实验结果 | 第78-79页 |
6.3.6 红曲色素热稳定性实验结果 | 第79-80页 |
6.4 小结 | 第80-82页 |
第七章 结论与展望 | 第82-84页 |
7.1 结论 | 第82-83页 |
7.2 展望 | 第83-84页 |
参考文献 | 第84-88页 |
致谢 | 第88页 |