| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第14-17页 |
| 第1章 绪论 | 第17-33页 |
| 1.1 引言 | 第17页 |
| 1.2 文献综述 | 第17-33页 |
| 1.2.1 癫痫与CREB | 第17-24页 |
| 1.2.2 癫痫与认知功能障碍 | 第24-29页 |
| 1.2.3 Ca~(2+)/CaM-CaMKIV-CREB信号通路在氧化应激导致TLE认知功能障碍中的作用 | 第29-33页 |
| 第2章 CREB参与氧化应激反应 | 第33-65页 |
| 2.1 实验材料 | 第33-35页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第33页 |
| 2.1.2 主要实验器械（仪器名称-型号-产地） | 第33-34页 |
| 2.1.3 主要实验试剂 | 第34-35页 |
| 2.1.4 主要试剂的配制 | 第35页 |
| 2.2 实验方法 | 第35-54页 |
| 2.2.1 CREB表达载体的构建 | 第35-40页 |
| 2.2.2 CREB干扰载体的构建 | 第40-42页 |
| 2.2.3 神经元原代培养、鉴定、转染及MitoQ浓度的筛选 | 第42-44页 |
| 2.2.4 ELISA | 第44-46页 |
| 2.2.5 Western blot | 第46-49页 |
| 2.2.6 q RT-PCR | 第49-53页 |
| 2.2.7 线粒体膜电位检测神经元凋亡 | 第53-54页 |
| 2.2.8 神经元ROS检测 | 第54页 |
| 2.2.9 统计学分析 | 第54页 |
| 2.3 实验结果 | 第54-63页 |
| 2.3.1 CREB表达载体的构建 | 第54-55页 |
| 2.3.2 CREB干扰载体的构建 | 第55-57页 |
| 2.3.3 乳鼠海马神经元鉴定 | 第57页 |
| 2.3.4 抗氧化剂MitoQ浓度的筛选 | 第57-58页 |
| 2.3.5 SOD与MDA的水平 | 第58页 |
| 2.3.6 Western blot与q RT-PCR | 第58-60页 |
| 2.3.7 线粒体膜电位检测神经元凋亡 | 第60-62页 |
| 2.3.8 神经元ROS检测 | 第62-63页 |
| 2.4 讨论 | 第63-65页 |
| 第3章 CREB参与氧化应激所致的TLE认知功能障碍 | 第65-85页 |
| 3.1 实验材料 | 第65-66页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第65页 |
| 3.1.2 主要实验器械（仪器名称-型号-产地） | 第65-66页 |
| 3.1.3 主要实验试剂 | 第66页 |
| 3.2 实验方法 | 第66-74页 |
| 3.2.1 实验分组及各组情况 | 第66-67页 |
| 3.2.2 行为学 | 第67-68页 |
| 3.2.3 ELISA | 第68页 |
| 3.2.4 免疫组化 | 第68-69页 |
| 3.2.5 Western blot | 第69-70页 |
| 3.2.6 q RT-PCR | 第70-73页 |
| 3.2.7 线粒体膜电位检测神经元凋亡 | 第73页 |
| 3.2.8 统计学分析 | 第73-74页 |
| 3.3 实验结果 | 第74-82页 |
| 3.3.1 行为学 | 第74-77页 |
| 3.3.2 SOD与MDA的水平 | 第77-78页 |
| 3.3.3 免疫组化 | 第78-79页 |
| 3.3.4 Western blot与q RT-PCR | 第79-80页 |
| 3.3.5 线粒体膜电位检测神经元凋亡 | 第80-82页 |
| 3.4 讨论 | 第82-85页 |
| 第4章 结论 | 第85-87页 |
| 第5章 创新点以及展望 | 第87-89页 |
| 参考文献 | 第89-99页 |
| 作者简介及在学期间取得的科研成果 | 第99-101页 |
| 致谢 | 第101页 |
