| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-18页 |
| 研究现状、成果 | 第12-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-18页 |
| 一、短期高脂饮食对肝脏脂代谢的影响 | 第18-44页 |
| 1.1 对象和方法 | 第18-31页 |
| 1.1.1 主要仪器 | 第18-19页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第19-20页 |
| 1.1.3 主要试剂的配制 | 第20-21页 |
| 1.1.4 实验对象和动物模型制备 | 第21-22页 |
| 1.1.5 腹腔葡萄糖耐量试验(Intraperitoneal Glucose Tolerance Test,IPGTT) | 第22-23页 |
| 1.1.6 动物取材 | 第23页 |
| 1.1.7 油红O染色 | 第23-24页 |
| 1.1.8 血浆脂质检测 | 第24-27页 |
| 1.1.9 肝脏脂质抽提和测量 | 第27页 |
| 1.1.10 实时定量PCR分析 | 第27-30页 |
| 1.1.11 统计学分析 | 第30-31页 |
| 1.2 结果 | 第31-41页 |
| 1.2.1 短期HFD喂养小鼠的一般情况 | 第31-32页 |
| 1.2.2 短期HFD喂养增加小鼠肝脏脂质沉积 | 第32-34页 |
| 1.2.3 短期HFD喂养导致胰岛素抵抗 | 第34-36页 |
| 1.2.4 短期HFD喂养改变了小鼠肝脏脂代谢相关基因的表达 | 第36-40页 |
| 1.2.5 短期HFD喂养改变了小鼠肝脏中FN和的α-SMA表达 | 第40-41页 |
| 1.3 讨论 | 第41-43页 |
| 1.4 小结 | 第43-44页 |
| 二、阻断纤维连接蛋白/整合素β信号通路对肝脏脂代谢的作用及其机制 | 第44-63页 |
| 2.1 对象和方法 | 第44-49页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第44-45页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第45-46页 |
| 2.1.3 主要试剂的配制 | 第46-47页 |
| 2.1.4 蛋白免疫印迹法(Western blot) | 第47-49页 |
| 2.1.5 实验对象和动物模型制备 | 第49页 |
| 2.1.6 实时定量PCR分析 | 第49页 |
| 2.1.7 统计学分析 | 第49页 |
| 2.2 结果 | 第49-61页 |
| 2.2.1 小鼠一般情况 | 第49-51页 |
| 2.2.2 阻断FN/整合素β信号通路进一步增加短期HFD诱导的肝脏脂质沉积 | 第51-53页 |
| 2.2.3 阻断FN/整合素β信号通路对小鼠糖代谢无明显影响 | 第53-54页 |
| 2.2.4 阻断FN/整合素β信号通路阻断了短期HFD喂养诱导的肝纤维化信号通路的激活 | 第54-55页 |
| 2.2.5 阻断FN/整合素β信号通路改变了小鼠肝脏脂代谢相关基因的表达 | 第55-59页 |
| 2.2.6 阻断FN/整合素β信号通路改变了小鼠肝脏代谢性核受体的表达 | 第59-61页 |
| 2.3 讨论 | 第61-62页 |
| 2.4 小结 | 第62-63页 |
| 三、阻断纤维连接蛋白/整合素β信号通路对HepG2细胞脂代谢的作用及其机制 | 第63-71页 |
| 3.1 对象和方法 | 第63-67页 |
| 3.1.1 主要仪器 | 第63-64页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第64页 |
| 3.1.3 主要试剂的配制 | 第64页 |
| 3.1.4 HepG2细胞的培养 | 第64-65页 |
| 3.1.5 HepG2细胞的传代 | 第65页 |
| 3.1.6 HepG2细胞的冻存 | 第65-66页 |
| 3.1.7 HepG2细胞的复苏 | 第66页 |
| 3.1.8 细胞的实验处理 | 第66页 |
| 3.1.9 实时定量PCR分析 | 第66-67页 |
| 3.1.10 统计学分析 | 第67页 |
| 3.2 结果 | 第67-69页 |
| 3.2.1 FN抑制HepG2细胞脂质合成基因的表达,阻断FN/整合素β信号通路可以阻断FN对脂质合成的抑制作用 | 第67-69页 |
| 3.3 讨论 | 第69-71页 |
| 结论 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-77页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第77-78页 |
| 综述 PPARγ与非酒精性脂肪性肝病 | 第78-86页 |
| 综述参考文献 | 第83-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
