| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 缩略词表 | 第10-13页 |
| 前言 | 第13-17页 |
| 材料 | 第17-21页 |
| 1.细胞和动物 | 第17页 |
| 2.主要试剂及配制方法 | 第17-18页 |
| 3.抗体及试剂 | 第18-19页 |
| 3.1 抗体 | 第18-19页 |
| 3.2 试剂 | 第19页 |
| 4.试剂盒 | 第19-20页 |
| 5.实验仪器和设备 | 第20-21页 |
| 方法 | 第21-31页 |
| 1.细胞培养及相关检测 | 第21-24页 |
| 1.1 细胞复苏 | 第21页 |
| 1.2 细胞培养及传代 | 第21页 |
| 1.3 铺板 | 第21-22页 |
| 1.4 WesternBlot检测细胞损伤和NLRP3炎症小体活化 | 第22-23页 |
| 1.5 Caspase3/7活性试剂盒检测NCM460细胞损伤情况 | 第23页 |
| 1.6 ROS检测试剂盒检测NCM460细胞的损伤 | 第23-24页 |
| 1.7 流式细胞术检测NCM460细胞凋亡情况 | 第24页 |
| 2.动物模型建立 | 第24-30页 |
| 2.1 体重和疾病活动指数(DAI)监测 | 第24-25页 |
| 2.2 结肠长度测量 | 第25页 |
| 2.3 结肠组织的石蜡切片制作和组织病理学分析 | 第25-27页 |
| 2.4 小鼠淋巴结中的巨噬细胞流式检测 | 第27-28页 |
| 2.5 ELISA验证小鼠血清中IL-1β的含量 | 第28页 |
| 2.6 Real-TimePCR检测相关基因的改变 | 第28-30页 |
| 3.统计学分析 | 第30-31页 |
| 结果 | 第31-43页 |
| 1.sDR5-Fc能够改善UC的疾病进展 | 第31-32页 |
| 2.sDR5-Fc能够减轻UC炎症的发展 | 第32-36页 |
| 2.1 sDR5-Fc能够减少UC小鼠巨噬细胞的浸润 | 第32-33页 |
| 2.2 sDR5-Fc能够抑制NLRP3炎症小体的活化 | 第33-35页 |
| 2.3 sDR5-Fc可以抑制TNFα和MCP-1的基因表达 | 第35-36页 |
| 3.TRAIL能够诱导THP-1细胞NLRP3炎症小体的活化 | 第36-37页 |
| 4.sDR5-Fc能够抑制THP-1细胞NLRP3炎症小体的活化 | 第37-38页 |
| 5.sDR5-Fc可以抑制TRAIL诱导的NCM460细胞凋亡 | 第38-41页 |
| 6.sDR5-Fc安全性初步评价 | 第41-43页 |
| 讨论 | 第43-47页 |
| 结论 | 第47-49页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
| 综述 | 第55-65页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| 致谢 | 第65-67页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第67-68页 |
