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辣椒CaHB3及CaCBSX3全长cDNA分离与功能初步分析

中文摘要第7-9页
Abstract第9-10页
1 引言第11-16页
    1.1 同源异型结构亮氨酸拉链蛋白结构特点与功能第13-15页
    1.2 胱硫醚β合酶(CBS)结构域蛋白的结构特点与功能第15-16页
    1.3 实验研究内容第16页
    1.4 实验研究的目的和意义第16页
2 材料与方法第16-21页
    2.1 实验材料第16-17页
        2.1.1 供试材料第16-17页
        2.1.2 主要仪器和试剂(见附录2、3、4)第17页
    2.2 实验方法第17-21页
        2.2.1 基因序列分析方法第17页
        2.2.2 引物设计与合成第17页
        2.2.3 PCR扩增第17页
        2.2.4 Gateway载体构建第17-18页
        2.2.5 E.coli感受态细胞的制备第18页
        2.2.6 感受态细胞热激法转化第18-19页
        2.2.7 烟草转基因第19页
        2.2.8 CTAB法提取辣椒基因组DNA第19页
        2.2.9 基因的瞬间表达第19-20页
        2.2.10 DAB染色法第20页
        2.2.11 台盼蓝染色第20页
        2.2.12 电导率测定第20-21页
3 实验结果与分析第21-34页
    3.1 CaHB3和CaCBSX3序列比对第21-25页
        3.1.1 CaHB3基因cDNA序列第21-22页
        3.1.2 CaHB3氨基酸序列第22-23页
        3.1.3 CaCBSX3基因cDNA序列第23-24页
        3.1.4 CaCBSX3氨基酸序列第24-25页
    3.2 载体构建第25-28页
    3.3 CaHB3和CaCBSX3的烟草遗传转化第28-29页
    3.4 GFP亚细胞定位第29-31页
    3.5 CaHB3和CaCBSX3瞬间表达刺激植物细胞坏死第31-32页
    3.6 CaHB3的启动子分析第32-34页
4 讨论第34-35页
5 展望第35页
6 后续工作第35-37页
7 参考文献第37-46页
附录1 缩略词及英汉对照第46页
附录2 主要仪器第46-47页
附录3 主要试剂第47页
附录4 试剂与缓冲液的配制第47-49页
附录5 培养基的配方第49-50页
附录6 Marker示意图第50-51页
附录7 本文中涉及的质粒第51-52页
附录8 烟草转基因流程第52-53页
附录9 载体构建的引物第53-54页
致谢第54页

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