| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 英文缩略词表 | 第7-8页 |
| 前言 | 第8-10页 |
| 技术路线图 | 第10-11页 |
| 第一部分 PPD的纯度测定 | 第11-13页 |
| 1 实验材料 | 第11-12页 |
| 1.1 实验药品 | 第11页 |
| 1.2 主要试剂及耗材 | 第11页 |
| 1.3 主要仪器 | 第11-12页 |
| 2 试验方法 | 第12页 |
| 2.1 色谱条件 | 第12页 |
| 2.2 溶液配制 | 第12页 |
| 2.3 进样方法 | 第12页 |
| 3 实验结果 | 第12-13页 |
| 4 小结 | 第13页 |
| 第二部分 PPD无细胞毒性剂量确定 | 第13-16页 |
| 1 实验材料 | 第13页 |
| 1.1 实验对象 | 第13页 |
| 1.2 试验药物 | 第13页 |
| 1.3 仪器 | 第13页 |
| 2 实验方法 | 第13-15页 |
| 2.1 试剂的准备 | 第13-14页 |
| 2.2 Raw264.7巨噬细胞复苏、传代、冻存 | 第14页 |
| 2.3 PPD处理Raw264.7巨噬细胞 | 第14页 |
| 2.4 SRB检测巨噬细胞增殖 | 第14-15页 |
| 2.5 统计方法 | 第15页 |
| 3 实验结果 | 第15页 |
| 4 小结 | 第15-16页 |
| 第三部分 PPD对LPS诱导的巨噬细胞IL-1β及其相关信号通路的影响 | 第16-30页 |
| 1 实验材料 | 第16-17页 |
| 1.1 实验对象 | 第16页 |
| 1.2 试验药物和试剂 | 第16-17页 |
| 1.3 仪器 | 第17页 |
| 2 实验方法 | 第17-22页 |
| 2.1 Raw264.7巨噬细胞培养 | 第17页 |
| 2.2 LPS处理巨噬细胞 | 第17-18页 |
| 2.3 PPD处理巨噬细胞 | 第18页 |
| 2.4 荧光定量PCR | 第18-21页 |
| 2.4.1 细胞中RNA的提取 | 第18-19页 |
| 2.4.2 RNA浓度测定 | 第19页 |
| 2.4.3 细胞中RNA的反转录及扩增 | 第19-20页 |
| 2.4.4 实验数据的处理 | 第20-21页 |
| 2.5 westernblot | 第21页 |
| 2.6 统计方法 | 第21-22页 |
| 3 实验结果 | 第22-30页 |
| 3.1 LPS诱导巨噬细胞IL-1β的表达 | 第22-23页 |
| 3.2 LPS诱导巨噬细胞TLR2/MAPK/NF-κB通路活化 | 第23-24页 |
| 3.3 LPS诱导巨噬细胞NLRP3/caspase-1通路的表达 | 第24-25页 |
| 3.4 PPD对LPS诱导的巨噬细胞IL-1β表达的影响 | 第25-26页 |
| 3.5 PPD对LPS诱导巨噬细胞TLR2/MAPK/NF-κB通路的影响 | 第26-29页 |
| 3.6 PPD对LPS诱导巨噬细胞NLRP3/caspase-1通路蛋白表达的影响 | 第29-30页 |
| 4 小结 | 第30页 |
| 第四部分 PPD对LPS诱导的巨噬细胞AA代谢通路的影响 | 第30-36页 |
| 1 实验材料 | 第31页 |
| 1.1 实验对象 | 第31页 |
| 1.2 试验药物和试剂 | 第31页 |
| 1.3 仪器 | 第31页 |
| 2 实验方法 | 第31-33页 |
| 2.1 LPS处理巨噬细胞 | 第31-32页 |
| 2.2 PPD处理巨噬细胞 | 第32页 |
| 2.3 ELISA检测 | 第32-33页 |
| 2.4 统计方法 | 第33页 |
| 3 实验结果 | 第33-36页 |
| 3.1 LPS诱导PLA2/COX-2/LTB4的表达 | 第33-34页 |
| 3.2 PPD对LPS诱导的巨噬细胞PLA2/COX-2/PGE2/LTB4表达的影响 | 第34-36页 |
| 4 小结 | 第36页 |
| 讨论 | 第36-41页 |
| 结论 | 第41页 |
| 问题与展望 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-45页 |
| 综述 薯蓣属植物皂苷类成分抗炎活性研究进展 | 第45-57页 |
| 参考文献 | 第52-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 在读期间公开发表的学术论文、专著及科研成果 | 第58-59页 |
