| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 第一章 GDF11促进糖尿病大鼠缺血下肢血管新生的作用 | 第11-31页 |
| 1.1 前言 | 第11-12页 |
| 1.2 实验试剂及仪器 | 第12-16页 |
| 1.2.1 实验试剂 | 第12-13页 |
| 1.2.2 实验主要仪器 | 第13-15页 |
| 1.2.3 溶液配制 | 第15-16页 |
| 1.3 实验方法 | 第16-21页 |
| 1.3.1 实验动物饲养及模型建立 | 第16-17页 |
| 1.3.2 各组大鼠代谢水平测定 | 第17-19页 |
| 1.3.3 激光多普勒检测血流检测 | 第19页 |
| 1.3.4 毛细血管密度测定 | 第19-21页 |
| 1.4 统计分析 | 第21页 |
| 1.5 结果 | 第21-27页 |
| 1.5.1 GDF11对糖尿病大鼠糖脂代谢的影响 | 第21-24页 |
| 1.5.2 GDF11促进糖尿病下肢缺血大鼠血流恢复 | 第24-26页 |
| 1.5.3 GDF11促进糖尿病大鼠缺血下肢血管生成 | 第26-27页 |
| 1.6 讨论 | 第27-29页 |
| 1.7 结论 | 第29页 |
| 参考文献 | 第29-31页 |
| 第二章 GDF11对糖尿病下肢缺血大鼠体内内皮祖细胞数量及功能的影响 | 第31-48页 |
| 2.1 前言 | 第31-32页 |
| 2.2 实验试剂与仪器 | 第32-34页 |
| 2.2.1 实验主要仪器 | 第32-33页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第33-34页 |
| 2.2.3 试剂配制 | 第34页 |
| 2.3 实验方法 | 第34-38页 |
| 2.3.1 实验动物饲养及模型建立 | 第34页 |
| 2.3.2 外周血EPCs数量测定 | 第34-35页 |
| 2.3.3 腓肠肌组织病理检测 | 第35-36页 |
| 2.3.4 大鼠骨髓来源EPCs培养与鉴定 | 第36-37页 |
| 2.3.5 EPCs迁移功能测定 | 第37-38页 |
| 2.3.6 EPCs小管形成能力测定 | 第38页 |
| 2.4 统计分析 | 第38页 |
| 2.5 结果 | 第38-42页 |
| 2.5.1 GDF11升高糖尿病大鼠循环中EPCs数量 | 第38-39页 |
| 2.5.2 GDF11促进糖尿病大鼠体内EPCs归巢 | 第39-40页 |
| 2.5.3 EPCs鉴定结果 | 第40-41页 |
| 2.5.4 EPCs迁移及小管生成能力 | 第41-42页 |
| 2.6 讨论 | 第42-45页 |
| 2.7 结论 | 第45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 第三章 GDF11促进糖尿病大鼠血管新生作用的机制 | 第48-62页 |
| 3.1 前言 | 第48-49页 |
| 3.2 实验仪器及试剂 | 第49-52页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第49页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第49-51页 |
| 3.2.3 溶液配制 | 第51-52页 |
| 3.3 实验方法 | 第52-55页 |
| 3.3.1 实验动物饲养、分组及模型建立 | 第52页 |
| 3.3.2 Western blot检测组织相关蛋白的表达 | 第52-55页 |
| 3.4 统计分析 | 第55页 |
| 3.5 结果 | 第55-58页 |
| 3.5.1 GDF11可激活TGF-β/Smad2信号通路 | 第55-57页 |
| 3.5.2 GDF11可激活AKT/HIF1α信号通路 | 第57-58页 |
| 3.6 讨论 | 第58-59页 |
| 3.7 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-62页 |
| 全文结论 | 第62-63页 |
| 综述 | 第63-73页 |
| 参考文献 | 第71-73页 |
| 攻读学位期间成果 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
