| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略表 | 第10-11页 |
| 引言 | 第11-13页 |
| 第1章 PTEN过表达及突变对肝星状细胞黏附与迁移的影响 | 第13-37页 |
| 1.1 实验材料 | 第13-16页 |
| 1.1.1 实验细胞 | 第13页 |
| 1.1.2 重组腺病毒 | 第13页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第13-14页 |
| 1.1.4 主要试剂的配置 | 第14-15页 |
| 1.1.5 主要实验仪器 | 第15-16页 |
| 1.2 实验方法 | 第16-21页 |
| 1.2.1 细胞培养 | 第16页 |
| 1.2.2 重组腺病毒扩增及滴度测定 | 第16-17页 |
| 1.2.3 腺病毒转染HSC | 第17-18页 |
| 1.2.4 应用Western blot技术检测HSC的PTEN蛋白表达 | 第18-20页 |
| 1.2.5 细胞黏附实验 | 第20页 |
| 1.2.6 细胞划痕修复实验 | 第20-21页 |
| 1.2.7 细胞跨膜迁移实验 | 第21页 |
| 1.2.8 统计学方法 | 第21页 |
| 1.3 结果 | 第21-30页 |
| 1.3.1 腺病毒扩增 | 第21-22页 |
| 1.3.2 腺病毒滴度 | 第22-23页 |
| 1.3.3 腺病毒感染HSC的感染效率 | 第23-24页 |
| 1.3.4 野生型PTEN及G129E在活化HSC大量表达 | 第24页 |
| 1.3.5 过表达的野生型PTEN及G129E抑制活化HSC黏附 | 第24-26页 |
| 1.3.6 过表达的野生型PTEN及G129E对活化HSC平面迁移的影响 | 第26-28页 |
| 1.3.7 过表达的野生型PTEN及G129E对活化HSC跨膜迁移的影响 | 第28-30页 |
| 1.4 讨论 | 第30-33页 |
| 1.4.1 肝星状细胞与肝纤维化 | 第30页 |
| 1.4.2 PTEN与纤维化疾病 | 第30-31页 |
| 1.4.3 肝星状细胞与黏附迁移 | 第31-32页 |
| 1.4.4 PTEN对HSC黏附迁移的影响 | 第32-33页 |
| 1.5 本章小结 | 第33页 |
| 参考文献 | 第33-37页 |
| 第2章综述 肝星状细胞活化过程中的信号转导 | 第37-47页 |
| 2.1 肝星状细胞 | 第37-38页 |
| 2.2 肝星状细胞的活化 | 第38页 |
| 2.2.1 启动阶段 | 第38页 |
| 2.2.2 持续阶段 | 第38页 |
| 2.3 肝星状细胞的活化过程中所涉及的信号转导 | 第38-43页 |
| 2.3.1 TGFβ/Smad信号转导 | 第38-39页 |
| 2.3.2 PDGF信号转导 | 第39-41页 |
| 2.3.3 血管紧张素Ⅱ信号转导 | 第41页 |
| 2.3.4 Wnt信号转导 | 第41-42页 |
| 2.3.5 Rho/ROCK信号转导 | 第42页 |
| 2.3.6 Hedgehog/Gli信号转导 | 第42页 |
| 2.3.7 整合素（integrin）信号转导 | 第42-43页 |
| 2.3.8 Notch信号转导 | 第43页 |
| 2.3.9 其他与HSC活化相关的信号转导 | 第43页 |
| 2.4 结语 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 导师简介 | 第49-50页 |
| 作者简介 | 第50-51页 |
| 学位论文数据集 | 第51页 |
