| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 缩略词表 | 第11-13页 |
| 1 引言 | 第13-15页 |
| 2 材料 | 第15-19页 |
| 2.1 实验相关材料 | 第15页 |
| 2.2 相关实验试剂及其配制 | 第15-18页 |
| 2.3 主要实验仪器 | 第18-19页 |
| 3 方法 | 第19-28页 |
| 3.1 蛋白提取 | 第19页 |
| 3.1.1 组织蛋白提取 | 第19页 |
| 3.1.2 细胞蛋白提取 | 第19页 |
| 3.2 蛋白浓度测定 | 第19-20页 |
| 3.3 蛋白印记 | 第20-22页 |
| 3.3.1 跑胶 | 第20-21页 |
| 3.3.2 转膜 | 第21-22页 |
| 3.4 细胞复苏、培养及其冻存 | 第22页 |
| 3.4.1 细胞复苏 | 第22页 |
| 3.4.2 细胞培养 | 第22页 |
| 3.4.3 细胞冻存 | 第22页 |
| 3.5 细胞转染 | 第22-23页 |
| 3.6 稳定细胞株的构建 | 第23页 |
| 3.7 免疫共沉淀 | 第23-24页 |
| 3.8 免疫荧光激光共聚焦 | 第24页 |
| 3.9 体外DNA损伤模型 | 第24-25页 |
| 3.10 细胞划痕愈合实验 | 第25页 |
| 3.11 MTT法测细胞生长曲线 | 第25页 |
| 3.12 平板克隆形成实验 | 第25-26页 |
| 3.13 裸鼠成瘤 | 第26页 |
| 3.14 石蜡包埋及切片 | 第26-27页 |
| 3.15 免疫组化 | 第27-28页 |
| 4 结果 | 第28-38页 |
| 4.1 HCV阳性HCC病人肝组织中TIPE2表达下调 | 第28页 |
| 4.2 HCV编码蛋白NS5A促使TIPE2降解 | 第28-29页 |
| 4.3 TIPE2与NS5A相互作用 | 第29-31页 |
| 4.4 TIPE2调控DNA损伤通路（体外） | 第31-32页 |
| 4.5 TIPE2抑制稳定株细胞恶性生物学行为 | 第32-35页 |
| 4.5.1 TIPE2抑制稳定株细胞划痕愈合 | 第32-33页 |
| 4.5.2 TIPE2抑制稳定株细胞增殖 | 第33-34页 |
| 4.5.3 TIPE2抑制稳定株细胞克隆形成 | 第34-35页 |
| 4.6 TIPE2抑制裸鼠成瘤 | 第35-36页 |
| 4.7 TIPE2调控DNA损伤通路（体内） | 第36-38页 |
| 5 讨论 | 第38-40页 |
| 结论 | 第40-42页 |
| 参考文献 | 第42-46页 |
| 综述 | 第46-58页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 致谢 | 第58-60页 |
| 在读期间参加的学术会议与研究成果 | 第60-61页 |