| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3页 |
| 引言 | 第6-9页 |
| 1. 第一章 实验材料 | 第9-14页 |
| 1.1. 实验动物 | 第9页 |
| 1.2. 实验器材 | 第9-10页 |
| 1.2.1. 手术器械 | 第9页 |
| 1.2.2. 辅助器材 | 第9-10页 |
| 1.3. 实验仪器和设备 | 第10页 |
| 1.4. 主要实验试剂及试剂配制 | 第10-14页 |
| 1.4.1. 主要实验试剂 | 第10-11页 |
| 1.4.2. 主要试剂配制 | 第11-14页 |
| 2. 第二章 实验方法 | 第14-24页 |
| 2.1. 动物模型的制作 | 第14-15页 |
| 2.1.1. 大鼠准备 | 第14页 |
| 2.1.2. 线栓的制备 | 第14页 |
| 2.1.3. 大鼠手术 | 第14页 |
| 2.1.4. 术后评分 | 第14页 |
| 2.1.5. 实验动物分组 | 第14-15页 |
| 2.2. TTC染色 | 第15页 |
| 2.3. 大鼠的治疗 | 第15页 |
| 2.4. Caspase-3PCR检测 | 第15-18页 |
| 2.4.1. RNA提取 | 第15-16页 |
| 2.4.2. RNA反转录成cDNA | 第16-17页 |
| 2.4.3. RT—PCR | 第17-18页 |
| 2.4.4. 琼脂糖凝胶电泳检测基因表达 | 第18页 |
| 2.5. caspase-3 免疫组化检测 | 第18-19页 |
| 2.5.1. 大鼠灌注 | 第18页 |
| 2.5.2. 脑组织切片 | 第18-19页 |
| 2.5.3. 免疫组织化学染色 | 第19页 |
| 2.6. Caspase-3WesternbIot的检测 | 第19-21页 |
| 2.6.1. 总蛋白提取 | 第19页 |
| 2.6.2. WesternbIot技术步骤 | 第19-21页 |
| 2.6.2.1. SDS-PAGE电泳 | 第19-20页 |
| 2.6.2.2. 电转膜(湿转) | 第20页 |
| 2.6.2.3. 免疫反应 | 第20页 |
| 2.6.2.4. 化学发光及曝光 | 第20-21页 |
| 2.6.2.5. 凝胶图象分析 | 第21页 |
| 2.7. 神经细胞凋亡检测 | 第21-23页 |
| 2.7.1. 实验试剂 | 第21页 |
| 2.7.2. 实验器材 | 第21-22页 |
| 2.7.3. 实验方法 | 第22-23页 |
| 2.8. 统计学分析 | 第23-24页 |
| 3. 第三章 结果 | 第24-29页 |
| 3.1. TTC染色结果 | 第24页 |
| 3.2. DiL标记的MSCs在脑组织中的分布 | 第24-25页 |
| 3.3. 神经功能评分 | 第25页 |
| 3.4. MSCs对缺血再灌注大鼠脑组织caspase-3 表达的影响 | 第25-26页 |
| 3.5. MSCs对缺血再灌注大鼠脑组织Caspase-3 蛋白表达的影响 | 第26-27页 |
| 3.6. 结果汇总 | 第27-29页 |
| 4. 第四章 讨论 | 第29-33页 |
| 4.1. 实验注射方法的选取和检测指标的选取 | 第29-31页 |
| 4.2. 实验结果讨论与分析 | 第31-33页 |
| 参考文献 | 第33-36页 |
| 综述 | 第36-43页 |
| 综述参考文献 | 第41-43页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第43-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
