| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 绪论 | 第12-25页 |
| 1.1 高尿酸血症及痛风症的研究现状 | 第12-16页 |
| 1.1.1 概述 | 第12页 |
| 1.1.2 高尿酸血症及痛风 | 第12-14页 |
| 1.1.3 高尿酸血症及痛风症的诊断与治疗 | 第14-16页 |
| 1.2 降尿酸活性物质研究 | 第16-20页 |
| 1.2.1 尿酸的生成及其功能 | 第16-17页 |
| 1.2.2 黄嘌呤氧化酶抑制活性的测定 | 第17-18页 |
| 1.2.3 天然产物的抗痛风活性 | 第18-19页 |
| 1.2.4 蛋白肽的抗痛风活性 | 第19-20页 |
| 1.3 生物活性肽的研究现状 | 第20-23页 |
| 1.3.1 生物活性肽的功能 | 第20-21页 |
| 1.3.2 生物活性肽的应用 | 第21-22页 |
| 1.3.3 生物活性肽的制备及分离纯化技术 | 第22-23页 |
| 1.4 本文的立题依据与研究内容 | 第23-25页 |
| 1.4.1 本文的立题依据与研究目的 | 第23-24页 |
| 1.4.2 本文的研究内容 | 第24-25页 |
| 第二章 黄嘌呤氧化酶体外抑制活性检测体系的建立与优化 | 第25-37页 |
| 2.1 引言 | 第25页 |
| 2.2 材料与方法 | 第25-27页 |
| 2.2.1 材料 | 第25-26页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第26页 |
| 2.2.3 主要试剂 | 第26页 |
| 2.2.4 实验方法 | 第26-27页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第27-35页 |
| 2.3.1 尿酸检测波长的确定 | 第27-28页 |
| 2.3.2 黄嘌呤氧化酶反应体系优化 | 第28-31页 |
| 2.3.3 尿酸的高效液相色谱法检测条件优化 | 第31-35页 |
| 2.4 本章小结 | 第35-37页 |
| 第三章 海洋鱼源抗痛风肽制备工艺优化 | 第37-49页 |
| 3.1 引言 | 第37页 |
| 3.2 材料与方法 | 第37-40页 |
| 3.2.1 材料 | 第37页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第37-38页 |
| 3.2.3 主要试剂 | 第38页 |
| 3.2.4 实验方法 | 第38-40页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第40-48页 |
| 3.3.1 海洋鱼基本成分分析 | 第40页 |
| 3.3.2 海洋鱼酶解中最佳用酶的筛选 | 第40-41页 |
| 3.3.3 复合酶解对海洋鱼酶解效果的影响 | 第41-42页 |
| 3.3.4 响应面法优化海洋鱼源抗痛风肽酶解工艺 | 第42-48页 |
| 3.4 本章小结 | 第48-49页 |
| 第四章 抗痛风肽在小鼠体内的降尿酸活性及其作用机理 | 第49-59页 |
| 4.1 引言 | 第49页 |
| 4.2 材料和方法 | 第49-53页 |
| 4.2.1 材料 | 第49页 |
| 4.2.2 药品和试剂 | 第49-50页 |
| 4.2.3 仪器与设备 | 第50页 |
| 4.2.4 动物饲养状况 | 第50页 |
| 4.2.5 实验方法 | 第50-53页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第53-57页 |
| 4.3.1 大鼠体重的变化 | 第53页 |
| 4.3.2 药物处理不同时间时模型大鼠血清尿酸含量的变化 | 第53-55页 |
| 4.3.3 药物处理 30d 时模型大鼠血清肌酐和尿素氮含量的变化 | 第55页 |
| 4.3.4 药物处理 30d时模型大鼠血清及肝脏中XOD及ADA酶活力的变化 | 第55-56页 |
| 4.3.5 抗痛风肽对氧嗪酸钾诱致高尿酸血症大鼠肝细胞XOD及ADA mRNA表达的影响 | 第56-57页 |
| 4.4 本章小结 | 第57-59页 |
| 结论与展望 | 第59-62页 |
| 一、结论 | 第59-60页 |
| 二、创新 | 第60页 |
| 三、展望 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-70页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 附件 | 第72页 |
