摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-8页 |
缩略词表 | 第9-13页 |
第一章 绪论 | 第13-19页 |
1.1 IDO与中枢神经系统疾病 | 第13-14页 |
1.1.1 IDO的生物学特性及功能 | 第13页 |
1.1.2 IDO的表达途径 | 第13页 |
1.1.3 IDO的代谢途径 | 第13-14页 |
1.1.4 IDO与中枢神经系统疾病 | 第14页 |
1.2 神经炎症反应与中枢神经系统疾病 | 第14-16页 |
1.2.1 中枢神经系统的免疫反应 | 第14-15页 |
1.2.2 促炎性细胞因子与中枢神经系统疾病 | 第15页 |
1.2.3 抗炎性细胞因子IL-10的神经保护作用 | 第15-16页 |
1.2.3.1 IL-10的生物学特性 | 第15页 |
1.2.3.2 中枢神经系统中 IL-10 的神经保护作用 | 第15-16页 |
1.3 抗炎性细胞因子IL-10抗炎作用的分子基础 | 第16-18页 |
1.3.1 IL-10与受体的相互作用 | 第16页 |
1.3.2 JAK1/STAT-3 介导IL-10抗炎症信号途径 | 第16-17页 |
1.3.3 IL-10诱发细胞因子信号抑制因子(SOCS3) | 第17-18页 |
1.4 本课题的研究目的 | 第18-19页 |
第二章 IL-10调控星形胶质细胞中IFN-Γ 引起的IDO表达 | 第19-42页 |
2.1 C57BL/6J小鼠星形胶质细胞培养体系 | 第19-22页 |
2.1.1 实验材料 | 第19-20页 |
2.1.2 实验试剂配制方法 | 第20页 |
2.1.3 实验方法 | 第20-22页 |
2.1.4 实验结果 | 第22页 |
2.2 原代星形胶质细胞鉴定 | 第22-25页 |
2.2.1 实验试剂及仪器 | 第22-23页 |
2.2.2 实验试剂配制 | 第23页 |
2.2.3 实验方法 | 第23-24页 |
2.2.4 实验结果 | 第24-25页 |
2.3 原代星形胶质细胞中IL-10对IDO MRNA的影响 | 第25-30页 |
2.3.1 实验试剂及仪器 | 第25-26页 |
2.3.2 实验试剂配制 | 第26页 |
2.3.3 实验方法 | 第26-29页 |
2.3.4 实验结果 | 第29-30页 |
2.4 IL-10刺激原代星形胶质细胞后IDO蛋白表达变化 | 第30-40页 |
2.4.1 实验试剂及仪器 | 第30-31页 |
2.4.2 实验试剂配制 | 第31-32页 |
2.4.3 实验方法 | 第32-36页 |
2.4.4 实验结果 | 第36-40页 |
2.5 讨论 | 第40-42页 |
第三章 JAK1/STAT-3 信号途径参与IL-10对IDO的表达调控 | 第42-47页 |
3.1 IL-10对STAT-3 磷酸化的影响 | 第42-44页 |
3.1.1 实验试剂及仪器 | 第42页 |
3.1.2 实验试剂配制 | 第42页 |
3.1.3 实验方法 | 第42-43页 |
3.1.4 实验结果 | 第43-44页 |
3.2 STAT-3 磷酸化对IDO表达的影响 | 第44-45页 |
3.2.1 实验试剂和仪器 | 第44页 |
3.2.2 实验试剂配制 | 第44页 |
3.2.3 实验方法 | 第44页 |
3.2.4 实验结果 | 第44-45页 |
3.3 讨论 | 第45-47页 |
第四章 JAK1/STAT3激活下游SOCS3调控IDO表达 | 第47-55页 |
4.1 IL-10激活STAT-3 信号途径并表达下游SOCS3 | 第47-50页 |
4.1.1 实验试剂及仪器 | 第47页 |
4.1.2 实验试剂配置 | 第47页 |
4.1.3 实验方法 | 第47-48页 |
4.1.4 实验结果 | 第48-50页 |
4.2 SOCS3抑制IDO途径中JAK1活性 | 第50-53页 |
4.2.1 实验试剂及仪器 | 第50页 |
4.2.2 实验试剂配置 | 第50页 |
4.2.3 实验方法 | 第50-51页 |
4.2.4 实验结果 | 第51-53页 |
4.3 IL-10抑制IDO表达信号通路 | 第53-54页 |
4.4 讨论 | 第54-55页 |
致谢 | 第55-56页 |
参考文献 | 第56-64页 |
攻读硕士期间取得的研究成果 | 第64-65页 |