| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-26页 |
| 1 芯片毛细管电泳 | 第12-20页 |
| ·理论基础 | 第13-15页 |
| ·芯片毛细管电泳的分离原理 | 第14-15页 |
| ·分离效率和分离度 | 第15页 |
| ·芯片毛细管电泳的加工技术 | 第15-16页 |
| ·芯片的材料 | 第15-16页 |
| ·微通道的加工 | 第16页 |
| ·芯片毛细管电泳工作电极的材料 | 第16页 |
| ·电泳芯片的检测技术 | 第16-18页 |
| ·芯片毛细管电泳的应用 | 第18-19页 |
| ·核酸分析 | 第18-19页 |
| ·蛋白质、多肽分析 | 第19页 |
| ·氨基酸的分离 | 第19页 |
| ·糖类化合物的分离检测 | 第19页 |
| ·药物分析 | 第19页 |
| ·芯片毛细管电泳的发展 | 第19-20页 |
| 2 芯片毛细管电泳电化学检测 | 第20-22页 |
| ·芯片毛细管电泳的电化学检测及应用 | 第20-22页 |
| ·安培检测法 | 第21页 |
| ·芯片毛细管电泳工作电极的材料 | 第21-22页 |
| 3 芯片毛细管电泳电化学酶催化分析 | 第22-24页 |
| ·电化学酶催化分析标记物 | 第22-23页 |
| ·芯片毛细管电泳酶催化分析应用 | 第23-24页 |
| ·酶联免疫分析 | 第23页 |
| ·生物素-亲和素系统酶增强分析 | 第23-24页 |
| 4 课题意义及主要内容 | 第24-26页 |
| ·课题意义 | 第24页 |
| ·本课题研究的主要内容 | 第24-25页 |
| ·课题意义及主要内容芯片毛细管电泳OAP（邻氨基酚）-HRP-H_2O_2 体系电化学酶增强体系的研究 | 第24-25页 |
| ·芯片毛细管电泳电化学免疫分析测定多种抗原（抗体） | 第25页 |
| ·芯片毛细管电泳电化学酶增强测定 DNA | 第25页 |
| ·MCE 存在的问题 | 第25-26页 |
| 第二章 PDMS/玻璃复合芯片及电极设计和加工 | 第26-30页 |
| 1 引言 | 第26页 |
| 2 聚二甲基硅氧烷（PDMS）/玻璃复合芯片及电极的设计和加工 | 第26-29页 |
| ·PDMS 电泳微芯片的制作 | 第26-27页 |
| ·芯片设计方案 | 第27-28页 |
| ·工作电极的制作 | 第28-29页 |
| ·PDMS/玻璃复合芯片的键合 | 第29页 |
| ·Ag/AgCl 参比电极的制作 | 第29页 |
| 3 小结 | 第29-30页 |
| 第三章 芯片毛细管电泳 HRP-H202-OAP 电化学检测平台的建立 | 第30-40页 |
| 1 引言 | 第30-31页 |
| 2 实验部分 | 第31-34页 |
| ·主要试剂 | 第31页 |
| ·仪器 | 第31页 |
| ·实验装置 | 第31-32页 |
| ·实验步骤 | 第32-34页 |
| 3 结果与讨论 | 第34-39页 |
| ·HRP 的电泳检测 | 第34-35页 |
| ·运行缓冲溶液浓度的选择 | 第35页 |
| ·分离电压的选择 | 第35-36页 |
| ·检测电势的选择 | 第36-37页 |
| ·进样时间和电压的选择 | 第37页 |
| ·双氧水浓度的选择 | 第37页 |
| ·OAP 浓度的选择 | 第37-38页 |
| ·HRP 标准曲线的绘制 | 第38-39页 |
| 4 小结 | 第39-40页 |
| 第四章 芯片毛细管电泳电化学酶联免疫分析检测甲胎蛋白和人绒毛膜促性腺激素（HCG） | 第40-50页 |
| 1 引言 | 第40-41页 |
| 2 实验部分 | 第41-42页 |
| ·主要试剂 | 第41页 |
| ·仪器 | 第41页 |
| ·免疫程序 | 第41-42页 |
| ·电泳过程 | 第42页 |
| ·人血清样品的准备和分析 | 第42页 |
| 3 结果与讨论 | 第42-49页 |
| ·检测电位的确定 | 第42-43页 |
| ·芯片毛细管电泳分离检测Ab*和Ag–Ab*的影响因素 | 第43-46页 |
| ·pH 的影响 | 第43-44页 |
| ·运行缓冲液浓度的影响 | 第44-45页 |
| ·分离电压的影响 | 第45-46页 |
| ·AFP 和HCG 标准曲线的绘制 | 第46-48页 |
| ·人血清中HCG 和AFP 的检测 | 第48-49页 |
| ·人血清中HCG 和AFP 的同时检测 | 第49页 |
| 4 小结 | 第49-50页 |
| 第五章 芯片毛细管电泳电化学检测多组分靶 DNA | 第50-61页 |
| 1 引言 | 第50-51页 |
| 2 实验部分 | 第51-54页 |
| ·主要试剂 | 第51-52页 |
| ·仪器 | 第52-53页 |
| ·DNA 的杂交过程 | 第53页 |
| ·电泳过程 | 第53页 |
| ·大肠杆菌（Escherichia coli）基因组DNA 的PCR 产物的制备 | 第53-54页 |
| 3 结果与讨论 | 第54-60页 |
| ·分离条件的优化 | 第54-55页 |
| ·酶促条件的优化 | 第55-56页 |
| ·ssDNA 和 dsDNA 的电泳图 | 第56-57页 |
| ·DNA 长度对电泳淌度的影响 | 第57-58页 |
| ·DNA 的定量分析和检测限 | 第58-59页 |
| ·大肠杆菌基因组 DNA 的 PCR 扩增产物的检测 | 第59-60页 |
| 4 小结 | 第60-61页 |
| 结论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 攻读学位期间发表及待发表的学术论文目录 | 第71-72页 |
