| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3页 |
| 引言 | 第8-10页 |
| 第一章 材料和方法 | 第10-18页 |
| 1.1 工具药 | 第10页 |
| 1.2 海马神经元的原代培养 | 第10-13页 |
| 1.2.1 动物选择 | 第10页 |
| 1.2.2 常用试剂 | 第10页 |
| 1.2.3 常用仪器 | 第10页 |
| 1.2.4 常用液体的配制 | 第10-11页 |
| 1.2.5 海马神经元的原代培养 | 第11-13页 |
| 1.3 免疫荧光法鉴定海马神经元的纯度 | 第13-14页 |
| 1.3.1 常用试剂 | 第13页 |
| 1.3.2 抗体 | 第13页 |
| 1.3.3 试剂盒 | 第13页 |
| 1.3.4 常用仪器 | 第13-14页 |
| 1.3.5 常用液体的配制 | 第14页 |
| 1.3.6 操作步骤 | 第14页 |
| 1.4 MTT法检测细胞凋亡率 | 第14-15页 |
| 1.4.1 常用试剂 | 第14页 |
| 1.4.2 常用仪器 | 第14-15页 |
| 1.4.3 常用液体的配制 | 第15页 |
| 1.4.4 MTT方法原理与操作步骤 | 第15页 |
| 1.5 线粒体酯化钙黄绿素(calcein AM)负载 | 第15-16页 |
| 1.5.1 常用试剂 | 第15页 |
| 1.5.2 常用仪器 | 第15-16页 |
| 1.5.3 常用液体的配制 | 第16页 |
| 1.5.4 calcein AM负载的原理与操作步骤 | 第16页 |
| 1.6 激光共聚焦检测线粒体calcein AM的荧光强度变化 | 第16-18页 |
| 1.6.1 常用试剂 | 第16页 |
| 1.6.2 常用仪器 | 第16页 |
| 1.6.3 常用液体的配制 | 第16-17页 |
| 1.6.4 细胞接种、分组与药物处理 | 第17页 |
| 1.6.5 操作步骤 | 第17-18页 |
| 1.7 数据处理和统计学分析 | 第18页 |
| 第二章 实验结果 | 第18-22页 |
| 2.1 原代培养大鼠海马神经元的形态观察及免疫荧光鉴定 | 第18-19页 |
| 2.1.1 海马神经元的形态观察 | 第18页 |
| 2.1.2 海马神经元免疫荧光鉴定 | 第18-19页 |
| 2.2 细胞凋亡情况测定结果 | 第19-21页 |
| 2.2.1 精胺对神经元细胞的抑制率 | 第19-20页 |
| 2.2.2 Ru360对神经元细胞的抑制率 | 第20页 |
| 2.2.3 环孢菌素对神经元细胞的抑制率 | 第20-21页 |
| 2.2.4 苍术甙对神经元细胞的抑制率 | 第21页 |
| 2.3 细胞线粒体mPTP的开放 | 第21-22页 |
| 第三章 讨论 | 第22-26页 |
| 3.1 动物模型的选择和纯度鉴定 | 第22-23页 |
| 3.2 mPTP在细胞缺血再灌注损伤中发挥了重要作用 | 第23-24页 |
| 3.3 MCU参与缺血再灌注过程并发挥了保护作用 | 第24页 |
| 3.4 MCU的激动或抑制能够调控mPTP的开放 | 第24-25页 |
| 3.5 展望 | 第25-26页 |
| 结论 | 第26-27页 |
| 参考文献 | 第27-29页 |
| 综述 | 第29-36页 |
| 综述参考文献 | 第34-36页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第36-37页 |
| 致谢 | 第37-38页 |
