| 中文摘要 | 第4-9页 |
| Abstract | 第9-15页 |
| 引言 | 第21-23页 |
| 第1章 文献综述 | 第23-43页 |
| 1.1 p53的表达调控及生物学功能 | 第23-36页 |
| 1.1.1 p53基因表达的调节 | 第23-31页 |
| 1.1.2 p53的生物学功能 | 第31-36页 |
| 1.2 MSCs在组织损伤修复中的作用 | 第36-43页 |
| 1.2.1 MSCs的定义及特异性标志物 | 第37页 |
| 1.2.2 MSCs的来源不同增殖能力不同 | 第37页 |
| 1.2.3 MSCs的体外诱导分化及机制 | 第37-38页 |
| 1.2.4 MSCs参与组织损伤修复及其机制 | 第38-41页 |
| 1.2.5 MSCs的临床应用及标准 | 第41-43页 |
| 第2章 材料与方法 | 第43-57页 |
| 2.1 材料 | 第43-45页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第43-44页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第44-45页 |
| 2.1.3 动物及细胞 | 第45页 |
| 2.2 方法 | 第45-57页 |
| 2.2.1 小鼠胸腺瘤模型制备 | 第45页 |
| 2.2.2 MSCs注射受照射小鼠 | 第45-47页 |
| 2.2.3 免疫组化检测p53的表达 | 第47-48页 |
| 2.2.4 RT-PCR检测基因表达量的变化 | 第48-50页 |
| 2.2.5 p53启动子甲基化检测及分析 | 第50-54页 |
| 2.2.6 目的基因测序 | 第54-57页 |
| 第3章 结果 | 第57-77页 |
| 3.1 小鼠MSCs的培养及鉴定 | 第57-58页 |
| 3.1.1 MSCs的形态观察 | 第57页 |
| 3.1.2 MSCs成骨、成脂分化 | 第57-58页 |
| 3.2 病理学检测分析小鼠胸腺结构 | 第58-60页 |
| 3.3 MSCs上调受照射的小鼠胸腺组织p53蛋白的表达量 | 第60-62页 |
| 3.4 MSCs上调受照射的小鼠胸腺组织p53 m RNA的表达量 | 第62-63页 |
| 3.5 分析MSCs影响辐射诱导的小鼠胸腺组织的p53启动子甲基化 | 第63-67页 |
| 3.5.1 应用MSP引物检测小鼠胸腺p53启动子甲基化 | 第63-64页 |
| 3.5.2 亚硫酸盐测序法（BSP）分析胸腺瘤组织p53启动子甲基化 | 第64页 |
| 3.5.3 亚硫酸盐测序法（BSP）分析MSCs对胸腺瘤组织p53启动子甲基化的影响 | 第64-67页 |
| 3.6 MSCs影响受照射小鼠胸腺p53基因突变 | 第67-71页 |
| 3.6.1 RT-PCR扩增小鼠胸腺p53基因 | 第67-68页 |
| 3.6.2 PCR产物克隆鉴定 | 第68-69页 |
| 3.6.3 测序及分析 | 第69-71页 |
| 3.7 MSCs影响p53信号通路相关基因的表达 | 第71-77页 |
| 3.7.1 MSCs对p53上游因子的影响 | 第71-73页 |
| 3.7.2 MSCs对p53靶基因的影响 | 第73-77页 |
| 第4章 讨论 | 第77-83页 |
| 第5章 结论 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-115页 |
| 附录 1 | 第115-135页 |
| 附录 2 | 第135-139页 |
| 个人简历及攻读博士期间发表的学术论文 | 第139-141页 |
| 致谢 | 第141页 |
