| 摘要 | 第7-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 缩略语表及其英汉对照 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-23页 |
| 1 大豆响应低磷胁迫的变化 | 第11-14页 |
| 1.1 形态的变化 | 第12-13页 |
| 1.2 生理生化的变化 | 第13-14页 |
| 2 参与磷酸盐调控的因子 | 第14-19页 |
| 2.1 磷酸盐转运蛋白 | 第14-15页 |
| 2.2 转录因子 | 第15-17页 |
| 2.3 活化有机磷的酶 | 第17-18页 |
| 2.4 质膜H~+-ATPase | 第18页 |
| 2.5 其他因子 | 第18-19页 |
| 3 过氧化物酶POD的相关研究 | 第19-20页 |
| 3.1 过氧化物酶在植物抗性中的作用 | 第19页 |
| 3.2 过氧化物酶在植物生长发育过程中的作用 | 第19-20页 |
| 4 数字基因表达谱分析在基因挖掘中的应用 | 第20-22页 |
| 4.1 数字基因表达谱分析的原理 | 第20-21页 |
| 4.2 数字基因表达谱分析的应用 | 第21-22页 |
| 5 本研究的目的和意义 | 第22-23页 |
| 第二章 大豆品种的耐低磷能力评价 | 第23-31页 |
| 1 材料和方法 | 第23-25页 |
| 1.1 试验材料 | 第23页 |
| 1.2 试验方法 | 第23-24页 |
| 1.3 测定指标 | 第24页 |
| 1.4 数据统计与分析 | 第24-25页 |
| 2 结果与分析 | 第25-29页 |
| 3 讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 OsPT2和OsPT6转基因大豆的遗传稳定性分析 | 第31-43页 |
| 1 材料和方法 | 第31-34页 |
| 1.1 试验材料 | 第31-32页 |
| 1.2 转基因大豆的分子生物学鉴定 | 第32-33页 |
| 1.3 转基因大豆的农艺性状调查 | 第33-34页 |
| 1.4 数据统计与分析 | 第34页 |
| 2 结果与分析 | 第34-40页 |
| 2.1 转基因大豆的扩繁 | 第34页 |
| 2.2 转基因大豆的遗传稳定性分析 | 第34-37页 |
| 2.3 转基因大豆的农艺性状调查 | 第37-40页 |
| 2.4 杂交组合配置 | 第40页 |
| 3 讨论 | 第40-43页 |
| 第四章 OsPT6转基因大豆的数字基因表达谱分析 | 第43-59页 |
| 1 材料和方法 | 第43-47页 |
| 1.1 植物材料与处理 | 第43-44页 |
| 1.2 总RNA的提取 | 第44-45页 |
| 1.3 数字基因表达谱测序 | 第45页 |
| 1.4 差异表达基因的筛选 | 第45页 |
| 1.5 GO和KEGG富集分析 | 第45-46页 |
| 1.6 qRT-PCR验证 | 第46-47页 |
| 2 结果与分析 | 第47-56页 |
| 2.1 测序质量分析 | 第47-48页 |
| 2.2 基因表达水平分析 | 第48页 |
| 2.3 差异表达基因的筛选 | 第48-50页 |
| 2.4 GO功能注释结果 | 第50-55页 |
| 2.5 KEGG代谢通路分析结果 | 第55-56页 |
| 2.6 qRT-PCR验证 | 第56页 |
| 3 讨论 | 第56-59页 |
| 第五章 大豆GmPOD1基因的克隆和表达分析 | 第59-69页 |
| 1 材料和方法 | 第59-63页 |
| 1.1 实验材料 | 第59-60页 |
| 1.2 实验方法 | 第60-63页 |
| 2 结果与分析 | 第63-66页 |
| 2.1 总RNA的提取 | 第63-64页 |
| 2.2 GmPCD1基因的全长cDNA克隆 | 第64-65页 |
| 2.3 GmPOD1基因的生物信息学分析 | 第65页 |
| 2.4 过表达载体的构建和转化拟南芥 | 第65-66页 |
| 2.5 转基因阳性苗的筛选和PCR检测 | 第66页 |
| 3 讨论 | 第66-69页 |
| 全文结论与创新之处 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-77页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第77-79页 |
| 致谢 | 第79页 |