| 中文摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 引言 | 第13-16页 |
| 第一章 高浓度FBS对HMC的促增殖作用 | 第16-25页 |
| 1 材料与方法 | 第16-20页 |
| 1.1 细胞来源及培养方法 | 第16页 |
| 1.2 主要试剂 | 第16页 |
| 1.3 主要实验仪器及耗材 | 第16-17页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第17-18页 |
| 1.5 主要实验方法 | 第18-20页 |
| 1.6 HMC细胞增殖率的计算 | 第20页 |
| 1.7 统计学分析 | 第20页 |
| 2 结果 | 第20-21页 |
| 3 讨论 | 第21-25页 |
| 3.1 FBS诱导HMC增殖的微环境 | 第21-23页 |
| 3.2 FBS和TGF-β1诱导HMC增殖的比较 | 第23-25页 |
| 4 结论 | 第25页 |
| 第二章 NCTD对高浓度FBS诱导的HMC凋亡的影响 | 第25-35页 |
| 1 材料 | 第25-26页 |
| 1.1 主要试剂 | 第25页 |
| 1.2 主要实验仪器及耗材 | 第25-26页 |
| 2 实验方法 | 第26-29页 |
| 2.1 相关试剂配制 | 第26页 |
| 2.2 MTT法检测NCTD对HMC的生长抑制作用 | 第26-27页 |
| 2.3 Hoechest 33258 染色法 | 第27-29页 |
| 2.4 统计学方法 | 第29页 |
| 3 结果 | 第29-33页 |
| 3.1 MTT法检测NCTD对HMC的生长抑制作用 | 第29-31页 |
| 3.2 Hoechest 33258 染色法观察人肾小球系膜细胞凋亡的形态学改变、计算凋亡率 | 第31-33页 |
| 4 讨论 | 第33-35页 |
| 5 结论 | 第35页 |
| 第三章 NCTD诱导HMC凋亡的机制初探 | 第35-52页 |
| 1 材料 | 第35-36页 |
| 1.1 主要试剂 | 第35-36页 |
| 1.2 主要实验仪器及耗材 | 第36页 |
| 2 实验方法 | 第36-44页 |
| 2.1 线粒体膜电位JC-1 荧光探针染色法 | 第36-38页 |
| 2.2 JC-1 流式细胞术检测法 | 第38-40页 |
| 2.3 Cyt-C Elisa酶联免疫吸附试验 | 第40-44页 |
| 2.4 统计学方法 | 第44页 |
| 3 结果 | 第44-49页 |
| 3.1 JC-1 荧光探针染色结果 | 第44-45页 |
| 3.2 JC-1 流式细胞术检测结果 | 第45-47页 |
| 3.3 细胞色素C酶联免疫吸附实验 | 第47-49页 |
| 4 讨论 | 第49-51页 |
| 5 结论 | 第51-52页 |
| 全文总结 | 第52-55页 |
| 参考文献 | 第55-62页 |
| 英汉缩略词对照表 | 第62-64页 |
| 综述 去甲斑蝥素研究进展及在肾脏病领域的应用前景 | 第64-84页 |
| 参考文献 | 第77-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 个人简历及攻读学位期间获得的科研成果 | 第85页 |
