| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略词表 | 第17-18页 |
| 第一章 前言 | 第18-21页 |
| 第二章 金纳米壳修饰的磁性温敏脂质体的制备 | 第21-55页 |
| 1 实验材料 | 第21-22页 |
| 1.1 仪器 | 第21页 |
| 1.2 试剂 | 第21-22页 |
| 2 实验方法 | 第22-31页 |
| 2.1 铁（Fe）含量测定方法的建立 | 第22-23页 |
| 2.1.1 检测波长的确定 | 第22-23页 |
| 2.1.2 标准曲线的建立 | 第23页 |
| 2.1.3 准确度 | 第23页 |
| 2.1.4 精密度 | 第23页 |
| 2.1.5 脂质体中铁含量的测定 | 第23页 |
| 2.2 阿霉素（DOX）含量紫外可见分光光度测定方法的建立 | 第23-24页 |
| 2.2.1 DOX检测波长的确定 | 第23-24页 |
| 2.2.2 专属性 | 第24页 |
| 2.2.3 标准曲线的建立 | 第24页 |
| 2.2.4 准确度 | 第24页 |
| 2.2.5 精密度 | 第24页 |
| 2.3 阿霉素（DOX）含量HPLC测定方法的建立 | 第24-26页 |
| 2.3.1 DOX检测波长的确定 | 第24-25页 |
| 2.3.2 色谱条件 | 第25页 |
| 2.3.3 标准曲线的建立 | 第25页 |
| 2.3.4 准确度 | 第25页 |
| 2.3.5 精密度 | 第25-26页 |
| 2.4 包封率的测定 | 第26页 |
| 2.4.1 超滤法 | 第26页 |
| 2.4.2 葡聚糖凝胶柱法 | 第26页 |
| 2.4.3 透析法 | 第26页 |
| 2.5 磁性纳米粒子的制备 | 第26-27页 |
| 2.6 磁性纳米粒子的表征 | 第27页 |
| 2.6.1 分散性与磁响应性 | 第27页 |
| 2.6.2 傅里叶变换红外光谱（FT-IR） | 第27页 |
| 2.6.3 X射线衍射（XRD） | 第27页 |
| 2.6.4 透射电镜（TEM）及EDS元素分析 | 第27页 |
| 2.7 磁性温敏脂质体的制备 | 第27-28页 |
| 2.8 磁性温敏脂质体的处方筛选 | 第28页 |
| 2.8.1 磷脂与胆固醇的比例 | 第28页 |
| 2.8.2 孵育温度 | 第28页 |
| 2.8.3 孵育时间 | 第28页 |
| 2.8.4 探超时间 | 第28页 |
| 2.8.5 药脂比 | 第28页 |
| 2.8.6 MNPs的量 | 第28页 |
| 2.9 磁性温敏脂质体表面金纳米壳的制备 | 第28-29页 |
| 2.9.1 HAuCl4与Vc量的选择 | 第29页 |
| 2.9.2 脂质体中金含量的测定 | 第29页 |
| 2.10 脂质体的性质考察 | 第29-31页 |
| 2.10.1 稳定性 | 第29页 |
| 2.10.2 粒径分布 | 第29页 |
| 2.10.3 透射电镜（TEM）及EDS元素分析 | 第29-30页 |
| 2.10.4 X射线衍射（XRD） | 第30页 |
| 2.10.5 紫外可见全波长扫描（UV-Vis） | 第30页 |
| 2.10.6 发热性能 | 第30页 |
| 2.10.7 磁学性质 | 第30页 |
| 2.10.8 体外释药行为考察 | 第30页 |
| 2.10.9 MRI与X-ray成像能力 | 第30-31页 |
| 3 结果与讨论 | 第31-53页 |
| 3.1 铁（Fe）含量的测定方法 | 第31-33页 |
| 3.1.1 邻二氮菲-铁配合物的检测波长 | 第31-32页 |
| 3.1.2 标准曲线 | 第32页 |
| 3.1.3 准确度 | 第32页 |
| 3.1.4 精密度 | 第32-33页 |
| 3.2 阿霉素（DOX）含量紫外可见分光光度测定方法 | 第33-35页 |
| 3.2.1 DOX的测定波长 | 第33页 |
| 3.2.2 标准曲线 | 第33-34页 |
| 3.2.3 准确度 | 第34页 |
| 3.2.4 精密度 | 第34-35页 |
| 3.3 阿霉素（DOX）含量HPLC测定方法 | 第35-37页 |
| 3.3.1 DOX的检测波长 | 第35页 |
| 3.3.2 专属性 | 第35-36页 |
| 3.3.3 标准曲线 | 第36页 |
| 3.3.4 准确度 | 第36-37页 |
| 3.3.5 精密度 | 第37页 |
| 3.4 包封率的测定方法 | 第37-38页 |
| 3.4.1 超滤法 | 第37-38页 |
| 3.4.2 葡聚糖凝胶柱法 | 第38页 |
| 3.4.3 透析法 | 第38页 |
| 3.5 磁性纳米粒子的表征 | 第38-41页 |
| 3.5.1 分散性与磁响应性 | 第38-39页 |
| 3.5.2 傅里叶变换红外光谱（FT-IR） | 第39-40页 |
| 3.5.3 X射线衍射（XRD） | 第40页 |
| 3.5.4 透射电镜（TEM）及EDS元素分析 | 第40-41页 |
| 3.6 磁性温敏脂质体的处方筛选 | 第41-45页 |
| 3.6.1 磷脂与胆固醇的比例 | 第41-42页 |
| 3.6.2 孵育温度 | 第42页 |
| 3.6.3 孵育时间 | 第42-43页 |
| 3.6.4 探超时间 | 第43页 |
| 3.6.5 药脂比 | 第43页 |
| 3.6.6 MNPs的量 | 第43-44页 |
| 3.6.7 磁性温敏脂质体的最优处方 | 第44页 |
| 3.6.8 HAuCl_4与Vc量的选择 | 第44-45页 |
| 3.7 脂质体的性质 | 第45-53页 |
| 3.7.1 稳定性 | 第45页 |
| 3.7.2 粒径分布 | 第45-46页 |
| 3.7.3 透射电镜（TEM）及EDS元素分析 | 第46-47页 |
| 3.7.4 X射线衍射（XRD） | 第47-48页 |
| 3.7.5 紫外可见全波长扫描（UV-Vis） | 第48页 |
| 3.7.6 发热性能 | 第48-49页 |
| 3.7.7 磁学性质 | 第49-50页 |
| 3.7.8 体外释药行为 | 第50-52页 |
| 3.7.9 MRI与X-ray成像能力 | 第52-53页 |
| 4 本章小结 | 第53-55页 |
| 第三章 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG的体外抗肿瘤活性研究 | 第55-70页 |
| 1 仪器与试剂 | 第55-57页 |
| 1.1 仪器 | 第55页 |
| 1.2 试剂 | 第55-56页 |
| 1.3 主要溶液的配制 | 第56-57页 |
| 1.3.1 PBS缓冲液 | 第56页 |
| 1.3.2 完全培养基 | 第56页 |
| 1.3.3 细胞冻存液 | 第56页 |
| 1.3.4 50%的三氯乙酸 | 第56页 |
| 1.3.5 1%的乙酸 | 第56页 |
| 1.3.6 4%的SRB | 第56页 |
| 1.3.7 10 mmol/L Tris碱 | 第56-57页 |
| 1.3.8 4%多聚甲醛固定液 | 第57页 |
| 1.3.9 DAPI染液 | 第57页 |
| 2 实验方法 | 第57-61页 |
| 2.1 人肝癌细胞HepG2的培养 | 第57-58页 |
| 2.1.1 细胞培养前的准备 | 第57页 |
| 2.1.2 细胞复苏 | 第57页 |
| 2.1.3 细胞传代 | 第57页 |
| 2.1.4 细胞冻存 | 第57-58页 |
| 2.2 空白脂质体对HepG2存活率的影响 | 第58页 |
| 2.3 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG的体外细胞摄取 | 第58-59页 |
| 2.4 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG在HepG2内药物的释放 | 第59页 |
| 2.5 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG对HepG2存活率的影响 | 第59-60页 |
| 2.6 外加磁场与RF作用下DOX-TSMLs-AuNSs-PEG对HepG2存活率的影响 | 第60页 |
| 2.7 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG对HepG2凋亡状况的影响 | 第60-61页 |
| 2.7.1 荧光显微镜检测细胞凋亡 | 第60页 |
| 2.7.2 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第60-61页 |
| 3 结果与讨论 | 第61-69页 |
| 3.1 空白脂质体对HepG2存活率的影响 | 第61-62页 |
| 3.2 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG的体外细胞摄取 | 第62-63页 |
| 3.3 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG在HepG2内药物的释放 | 第63-64页 |
| 3.4 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG对HepG2存活率的影响 | 第64-65页 |
| 3.5 外加磁场与RF作用下DOX-TSMLs-AuNSs-PEG对HepG2存活率的影响 | 第65-66页 |
| 3.6 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG对HepG2凋亡状况的影响 | 第66-69页 |
| 3.6.1 荧光显微镜检测细胞凋亡 | 第66-67页 |
| 3.6.2 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第67-69页 |
| 4 本章小结 | 第69-70页 |
| 第四章 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG的体内抗肿瘤活性研究 | 第70-90页 |
| 1 实验材料 | 第70-71页 |
| 1.1 仪器 | 第70页 |
| 1.2 试剂 | 第70-71页 |
| 1.3 实验动物 | 第71页 |
| 2 实验方法 | 第71-75页 |
| 2.1 荷瘤小鼠模型的建立 | 第71页 |
| 2.2 DOX含量测定方法的建立 | 第71-73页 |
| 2.2.1 色谱条件 | 第71页 |
| 2.2.2 生物样品预处理方法 | 第71-72页 |
| 2.2.2.1 血浆样品预处理方法 | 第71-72页 |
| 2.2.2.2 组织样品预处理方法 | 第72页 |
| 2.2.3 方法专属性考察 | 第72页 |
| 2.2.4 标准曲线的建立 | 第72页 |
| 2.2.5 回收率 | 第72-73页 |
| 2.2.6 精密度 | 第73页 |
| 2.3 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG的药物代谢动力学研究 | 第73-74页 |
| 2.4 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG在小鼠体内的组织分布研究 | 第74页 |
| 2.5 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG对小鼠肿瘤生长抑制的药效学研究 | 第74-75页 |
| 2.5.1 肿瘤生长抑制的药效学考察 | 第74页 |
| 2.5.2 HE染色病理切片 | 第74-75页 |
| 2.6 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG的体内成像能力考察 | 第75页 |
| 2.6.1 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG的MRI成像 | 第75页 |
| 2.6.2 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG的X-ray成像 | 第75页 |
| 3 结果与讨论 | 第75-88页 |
| 3.1 药物含量测定 | 第75-80页 |
| 3.1.1 专属性 | 第75-78页 |
| 3.1.2 标准曲线 | 第78页 |
| 3.1.3 回收率 | 第78-79页 |
| 3.1.4 精密度 | 第79-80页 |
| 3.2 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG的药物代谢动力学研究 | 第80-82页 |
| 3.3 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG在小鼠体内的组织分布 | 第82-84页 |
| 3.4 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG对小鼠肿瘤生长抑制的药效学研究 | 第84-88页 |
| 3.4.1 肿瘤生长抑制的药效学考察 | 第84-86页 |
| 3.4.2 HE染色病理切片 | 第86-88页 |
| 3.5 DOX-TSMLs-AuNSs-PEG的体内成像能力 | 第88页 |
| 4 本章小结 | 第88-90页 |
| 第五章 全文总结 | 第90-92页 |
| 参考文献 | 第92-98页 |
| 个人简介 | 第98-99页 |
| 致谢 | 第99页 |
