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生物法拆分扁桃酸及其相关衍生物的研究

摘要第4-7页
ABSTRACT第7-9页
第一章 绪论第15-33页
    1.1 手性药物的发展动态第15-16页
    1.2. 获得单一对映体手性化合物的途径、研发现状和策略第16-18页
        1.2.1 化学法获得手性化合物第16-17页
        1.2.2 生物技术在手性药物合成中的应用第17-18页
    1.3 光学纯的扁桃酸及其相关衍生物的药用价值第18-22页
        1.3.1 扁桃酸在医药中间体中的应用第18-20页
        1.3.2 扁桃酸苯环上不同取代基衍生物在医药中间体中的应用第20-21页
        1.3.3 扁桃酸侧链不同长度取代物在医药中间体中的应用第21-22页
    1.4 生物法制备光学纯扁桃酸和其相关衍生物的研究第22-26页
        1.4.1 腈转换酶第23页
        1.4.2 脂肪酶第23-24页
        1.4.3. 不对称氧化与不对称还原法第24-25页
        1.4.4. 发酵法第25-26页
    1.5 本论文的选题意义及研究内容第26-27页
    参考文献第27-33页
第二章 高通量筛选模型的构建及菌株的筛选第33-62页
    2.1 引言第33页
    2.2 筛选模型Ⅰ第33-44页
        2.2.1 材料与方法第35-37页
            2.2.1.1. 化学试剂与主要仪器第35-36页
            2.2.1.2. 培养基第36页
            2.2.1.3 菌株的初筛第36页
            2.2.1.4 菌株的复筛第36页
            2.2.1.5 2,4-二硝基苯肼显色法测定条件第36-37页
            2.2.1.6 液相分析检测条件第37页
        2.2.2 结果与讨论第37-44页
            2.2.2.1 红棕色化合物的全波长扫描第37-38页
            2.2.2.2 酮酸与2,4-二硝基苯肼形成的红棕色化合物的摩尔消光系数的测定第38-40页
            2.2.2.3 DNPH显色法准确性的验证第40-41页
            2.2.2.4 显色法测得的表观选择率E_(app)和真实选择率E_(true)的比较第41-43页
            2.2.2.5 运用高通量筛选模型进行的菌株筛选情况第43-44页
    2.3. 筛选模型Ⅱ第44-54页
        2.3.1 材料与方法第45-46页
            2.3.1.1 化学试剂与主要仪器第45页
            2.3.1.2 培养基第45页
            2.3.1.3 菌种的初筛第45页
            2.3.1.4 菌株的复筛第45-46页
            2.3.1.5 PPA与Fe~(3+)配合显色条件第46页
            2.3.1.6 液相分析检测条件第46页
        2.3.2 结果与讨论第46-54页
            2.3.2.1 蓝绿色的配合物的全波长扫描第46-47页
            2.3.2.2 显色体系pH对显色的影响第47-48页
            2.3.2.3 不同显色剂用量对显色反应的影响第48-49页
            2.3.2.4 不同的显色反应时间对吸光值的影响第49页
            2.3.2.5 蓝绿色配合物稳定性的考察第49-50页
            2.3.2.6 蓝绿色配合物线性范围的探究及摩尔消光系数的测定第50-51页
            2.3.2.7 显色法回收率实验第51页
            2.3.2.8 应用筛选模型进行菌株的筛选情况第51-53页
            2.3.2.9 菌株Sinorhizobium sp. ZJB-1 101拆分外消旋苯基乳酸的研究第53-54页
    2.4 相关菌株的鉴定第54-60页
        2.4.1 材料与方法第54-55页
            2.4.1.1 化学试剂与主要仪器第54页
            2.4.1.2 菌株的形态观察第54页
            2.4.1.3 生理生化特征研究第54-55页
            2.4.1.4 16S rDNA扩增与测序第55页
            2.4.1.5 系统发育学分析第55页
        2.4.2 结果与讨论第55-60页
            2.4.2.1 菌株ZJB1101的鉴定第55-57页
                2.4.2.1.1 ZJB-1101菌株形态观察第55-56页
                2.4.2.1.2 ZJB-1101 16S rDNA序列测序结果分析第56-57页
            2.4.2.2 菌株ZJB-1125的鉴定第57-60页
                2.4.2.2.1 ZJB-1125形态观察及生理生化鉴定第57-59页
                2.4.2.2.2 ZJB-1125 16S rDNA序列测序结果分析第59-60页
    2.5 本章小结第60页
    参考文献第60-62页
第三章 菌株酶解途径及底物特异性的研究第62-82页
    3.1 引言第62页
    3.2 材料与方法第62-67页
        3.2.1 菌种及静息细胞的制备第62-63页
            3.2.1.1 菌种第62-63页
            3.2.1.2 培养基第63页
            3.2.1.3 静息细胞的制备第63页
        3.2.2 静息细胞转化第63页
        3.2.3 手性柱上扁桃酸及其相关衍生物的分离第63页
        3.2.4. 菌株酶解途径的研究第63-64页
        3.2.5 产物的分离、提取及鉴定第64-65页
        3.2.6 菌株理化特性的比较和扁桃酸脱氢酶辅酶类型的探究第65-66页
        3.2.7 菌株底物特异性的研究第66页
        3.2.8 取代基效应的Hammett线性自由能方程第66-67页
        3.2.9 菌株Sinorhizobium sp. ZJB-1101催化各底物表观米氏常数的比较第67页
    3.3 结果与讨论第67-79页
        3.3.1 手性柱上扁桃酸及其相关衍生物的分离第67-69页
        3.3.2 菌株酶解途径的研究第69-71页
        3.3.3 产物的分离、提取及鉴定第71-73页
        3.3.4 两种菌株理化特性的比较和扁桃酸脱氢酶辅酶类型的探究第73-75页
        3.3.5 取代基效应的Hammett线性自由能方程第75-76页
        3.3.6 菌株Sinorhizobium sp. ZJB-1101催化各底物表观米氏常数的比较第76-77页
        3.3.7 菌株底物特异性的研究第77-79页
    3.4 本章小结第79页
    参考文献第79-82页
第四章 P.aeruginosa ZJB-1 125培养条件的研究第82-94页
    4.1 引言第82页
    4.2 材料与方法第82-83页
        4.2.1 菌种第82页
        4.2.2 培养基第82-83页
        4.2.3 菌种发酵与静息细胞的制备第83页
        4.2.4 生物量测定第83页
        4.2.5 全细胞转化条件第83页
    4.3 结果与讨论第83-92页
        4.3.1 产酶培养基组成的优化第83-90页
            4.3.1.1 诱导剂种类及添加量对菌体生长及产酶的影响第83-85页
            4.3.1.2 碳源的种类及浓度对菌体生长及产酶的影响第85-87页
            4.3.1.3 氮源的种类及浓度对菌体生长及产酶的影响第87-89页
            4.3.1.4 金属离子对菌体生长及产酶的影响第89-90页
            4.3.1.5 培养基正交实验第90页
        4.3.2 其它培养条件对菌体生长和产酶的影响第90-92页
            4.3.2.1 培养初始pH值对菌体生长以及产酶的影响第90-91页
            4.3.2.2 接种量对菌体生长和酶活力的影响第91-92页
    4.4 本章小结第92-93页
    参考文献第93-94页
第五章 P.aeruginosa ZJB-1 125拆分邻氯扁桃酸的研究第94-106页
    5.1 引言第94页
    5.2 材料与方法第94-97页
        5.2.1 菌种第94页
        5.2.2 培养基第94-95页
        5.2.3 细胞培养条件第95页
        5.2.4 静息细胞转化第95-97页
    5.3 结果与讨论第97-104页
        5.3.1 反应体系pH对菌体催化拆分外消旋邻氯扁桃酸的影响第97-98页
        5.3.2 底物浓度对菌体催化拆分条件的影响第98页
        5.3.3 反应温度对静息细胞催化拆分外消旋邻氯扁桃酸的影响第98-100页
        5.3.4 不同的菌体量对拆分外消旋邻氯扁桃酸的影响第100页
        5.3.5 静息细胞使用批次的影响第100-101页
        5.3.6 溶氧和氧载体对菌体拆分反应的影响第101-102页
        5.3.7 菌体热稳定性的研究第102-103页
        5.3.8 酶促反应动力学研究第103-104页
    5.4 本章小结第104-105页
    参考文献第105-106页
第六章 结论与展望第106-110页
    6.1 结论第106-108页
    6.2 展望第108-110页
附录第110-125页
攻读学位期间发表的学术论文第125-126页
致谢第126页

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