| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 第1章 绪论 | 第11-19页 |
| 1.1 水杨酸的研究现状 | 第11-13页 |
| 1.1.1 水杨酸的生理作用 | 第11页 |
| 1.1.2 水杨酸的信号作用 | 第11-12页 |
| 1.1.3 水杨酸提高植物抗病性的作用机制 | 第12-13页 |
| 1.2 植物PCD的研究进展 | 第13-15页 |
| 1.2.1 植物PCD的发展 | 第13页 |
| 1.2.2 植物PCD的发生机制 | 第13-14页 |
| 1.2.3 植物PCD的检测 | 第14-15页 |
| 1.3 植物PCD中线粒体介导作用的研究进展 | 第15-17页 |
| 1.3.1 植物PCD中线粒体的研究 | 第15-16页 |
| 1.3.2 植物PCD过程中线粒体相关基因的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.4 本研究的目的意义、研究内容与技术路线 | 第17-19页 |
| 1.4.1 目的意义 | 第17-18页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第18页 |
| 1.4.3 技术路线 | 第18-19页 |
| 第2章 SA诱导黄瓜PCD的鉴定 | 第19-26页 |
| 2.1 植物材料的培养 | 第19-20页 |
| 2.1.1 植物材料的培养和前期处理 | 第19页 |
| 2.1.2 化学试剂 | 第19页 |
| 2.1.3 仪器 | 第19页 |
| 2.1.4 营养液的配制 | 第19-20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-21页 |
| 2.2.1 ROS原位检测 | 第20-21页 |
| 2.2.2 Trypan blue染色 | 第21页 |
| 2.3 结果与分析 | 第21-24页 |
| 2.3.1 水杨酸、茉莉酸甲酯处理黄瓜叶片的形态变化 | 第21-22页 |
| 2.3.2 ROS的原位检测结果 | 第22-24页 |
| 2.3.3 Trypan blue染色 | 第24页 |
| 2.4 讨论 | 第24-26页 |
| 第3章 SA诱导黄瓜线粒体相关DEGs的表达分析 | 第26-41页 |
| 3.1 植物材料的培养和处理 | 第26-27页 |
| 3.1.1 植物材料的培养和前期处理 | 第26页 |
| 3.1.2 引物 | 第26页 |
| 3.1.3 化学试剂和试剂盒 | 第26页 |
| 3.1.4 仪器 | 第26-27页 |
| 3.1.5 营养液的配制 | 第27页 |
| 3.2 实验方法 | 第27-30页 |
| 3.2.1 黄瓜叶片的总RNA提取 | 第27页 |
| 3.2.2 cDNA的合成 | 第27页 |
| 3.2.3 线粒体相关基因的表达检测 | 第27-30页 |
| 3.3 结果与分析 | 第30-37页 |
| 3.3.1 水杨酸、霜霉病处理黄瓜叶片的形态变化 | 第30页 |
| 3.3.2 黄瓜总RNA的提取结果 | 第30-31页 |
| 3.3.3 黄瓜线粒体相关基因的RT-PCR表达分析 | 第31-33页 |
| 3.3.4 黄瓜线体体相关基因的qRT-PCR表达分析 | 第33-37页 |
| 3.4 讨论 | 第37-41页 |
| 3.4.1 SA和霜霉病诱导基因表达特征分析 | 第37页 |
| 3.4.2 参与线粒体跨膜转运的基因 | 第37-38页 |
| 3.4.3 参与线粒体呼吸作用的基因 | 第38页 |
| 3.4.4 参与蛋白质合成、折叠和转运的基因 | 第38-39页 |
| 3.4.5 参与线粒体信号转导的基因 | 第39-41页 |
| 第4章 黄瓜CsPHB3和CsProDH2的编码区全长序列的克隆及生物信息学分析 | 第41-50页 |
| 4.1 实验材料 | 第41-42页 |
| 4.1.1 植物材料的培养 | 第41页 |
| 4.1.2 菌株 | 第41页 |
| 4.1.3 化学试剂和试剂盒 | 第41-42页 |
| 4.1.4 主要仪器 | 第42页 |
| 4.2 实验方法 | 第42-44页 |
| 4.2.1 黄瓜总RNA的提取 | 第42页 |
| 4.2.2 基因扩增 | 第42页 |
| 4.2.3 CsPHB3和CsProDH2基因cDNA序列克隆 | 第42-44页 |
| 4.2.4 克隆产物序列测定及分析 | 第44页 |
| 4.3 结果分析 | 第44-48页 |
| 4.3.1 黄瓜CsPHB3和CsProDH2基因克隆及质粒双酶切鉴定 | 第44-45页 |
| 4.3.2 黄瓜CsPHB3和CsProDH2基因测序及序列分析 | 第45-48页 |
| 4.4 讨论 | 第48-50页 |
| 第5章 黄瓜CsPHB3和CsProDH2基因转化拟南芥 | 第50-57页 |
| 5.1 实验材料 | 第50-51页 |
| 5.1.1 植物材料的培养 | 第50页 |
| 5.1.2 载体与菌株 | 第50页 |
| 5.1.3 化学试剂和试剂盒 | 第50-51页 |
| 5.2 实验方法 | 第51-54页 |
| 5.2.1 表达载体构建 | 第51-52页 |
| 5.2.2 重组质粒导入农杆菌 | 第52-53页 |
| 5.2.3 浸花法转化拟南芥 | 第53-54页 |
| 5.3 结果分析 | 第54-55页 |
| 5.3.1 黄瓜CsPHB3和CsProDH2表达载体的构建及双酶切验证 | 第54页 |
| 5.3.2 黄瓜pBI121-CsPHB3/CsProDH2农杆菌转化及验证 | 第54-55页 |
| 5.4 讨论 | 第55-56页 |
| 5.5 本论文的创新点和下一步工作 | 第56-57页 |
| 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-68页 |
| 攻读硕士期间所发表的学术论文 | 第68-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
