| 目录 | 第4-6页 |
| 符号说明 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 1.材料与方法 | 第11-38页 |
| 1.1 实验动物 | 第11页 |
| 1.2 主要试剂及来源 | 第11页 |
| 1.3 主要溶液 | 第11-22页 |
| 1.4 体外热激法建立小鼠睾丸组织的热激模型以及形态学评价 | 第22-23页 |
| 1.5 TUNEL法检测热激后小鼠睾丸中生精细胞的凋亡 | 第23-24页 |
| 1.6 原位杂交法检测cdc2和cyclin B1基因的表达情况 | 第24-34页 |
| 1.7 免疫组化法检测p34~(cdc2)和Cyclin B1在热激处理前后小鼠生精细胞中的分布和表达 | 第34-35页 |
| 1.8 Western Blotting检测p34~(cdc2)和Cyclin B1在热激处理前后小鼠生精细胞中表达量的变化过程 | 第35-38页 |
| 2.实验结果 | 第38-50页 |
| 2.1 热激后小鼠睾丸组织中细胞凋亡的形态学变化 | 第38-40页 |
| 2.2 TUNE法检测热激后小鼠睾丸组织中生精细胞凋亡的结果 | 第40-42页 |
| 2.3 DIG标记的cdc2和cyclinB1 cRNA探针制备的结果 | 第42-43页 |
| 2.4 热激对小鼠睾丸组织中cdc2基因转录的影响 | 第43-44页 |
| 2.5 热激对小鼠睾丸组织中cyclinB1基因转录的影响 | 第44页 |
| 2.6 热激后小鼠睾丸组织中p34~(cdc2)蛋白的表达情况 | 第44-48页 |
| 2.7 热激后小鼠睾丸组织中Cyclin B1蛋白的表达情况 | 第48页 |
| 2.8 热激后小鼠睾丸组织中p34~(cdc2)和CyclinB1蛋白表达量的变化 | 第48-50页 |
| 3.讨论 | 第50-55页 |
| 3.1 温度对阴囊类动物生精过程有快速和深刻的影响 | 第50-51页 |
| 3.2 热激并不严重影响cyclinB1和cdc2的转录过程 | 第51页 |
| 3.3 热激最终导致了CyclinB1和p34~(cdc2)的翻泽受阻或降解加速 | 第51-52页 |
| 3.4 MPF的减少或消失是导致生精过程阻断以及生精细胞进入凋亡的主要原因之一 | 第52页 |
| 3.4 MPF的减少或消失是导致生精过程阻断以及生精细胞进入凋亡的主要原因之一 | 第52-53页 |
| 论文参考文献 | 第53-55页 |
| 综述：影响生精细胞凋亡的因素 | 第55-72页 |
| 1.原癌基因和抑癌基因对生精细胞凋亡的调控作用 | 第58-62页 |
| 1.1 bcl-2原癌基因家族 | 第58-60页 |
| 1.2 抑癌基因p53 | 第60-62页 |
| 1.3 原癌基因C-myc | 第62页 |
| 2.其它基因对生精细胞凋亡的影响 | 第62-64页 |
| 2.1 转录激活因子环腺苷酸反应成分调节子 | 第62-64页 |
| 2.2 热休克蛋白70基因 | 第64页 |
| 3.激素对生精细胞凋亡的调控作用 | 第64-69页 |
| 3.1 促性腺激素释放激素 | 第65页 |
| 3.2 促黄体素(LH) | 第65-66页 |
| 3.3 卵泡刺激素(FSH) | 第66-67页 |
| 3.4 睾酮 | 第67页 |
| 3.5 雌激素 | 第67-69页 |
| 4.其它因素对生精细胞凋亡的影响 | 第69-72页 |
| 4.1 射线等物理因素的影响 | 第69页 |
| 4.2 化学因素的影响 | 第69-70页 |
| 4.3 温度的影响 | 第70页 |
| 4.4 动物发育阶段的影响 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第79页 |
