内容提要 | 第4-6页 |
中文摘要 | 第6-9页 |
Abstract | 第9-12页 |
英文缩写词表 | 第13-18页 |
第1章 文献综述 | 第18-36页 |
1 脊髓损伤的病理生理及临床表现 | 第18-21页 |
1.1 神经元损伤的病理改变 | 第19页 |
1.2 兴奋性氨基酸的神经毒性作用 | 第19-20页 |
1.3 细胞内Ca~(2+)的调控失调 | 第20页 |
1.4 一氧化氮和自由基的损害 | 第20页 |
1.5 花生四烯酸级联反应 | 第20页 |
1.6 内源性阿片肽物质的有害作用 | 第20页 |
1.7 创伤与神经细胞骨架 | 第20-21页 |
1.8 缺血后延迟性低灌流学说 | 第21页 |
2 损伤脊髓的再生与修复 | 第21-25页 |
2.1 诱导或促进神经元生长的物质研究 | 第22-23页 |
2.2 信号转导分子 | 第23-24页 |
2.3 神经突起生长抑制物及其抗体 | 第24-25页 |
2.4 胶原组织细胞的抑制突起生长作用 | 第25页 |
3 脊髓损伤治疗的研究进展 | 第25-30页 |
3.1 脊髓损伤手术减压及手术内固定 | 第25-26页 |
3.2 脊髓损伤后药物治疗 | 第26-28页 |
3.3 细胞移植及基因治疗脊髓损伤 | 第28-29页 |
3.4 脊髓损伤后的康复治疗 | 第29-30页 |
4 骨髓间充质干细胞治疗SCI的研究现状 | 第30-36页 |
4.1 BMSCs的培养 | 第30-31页 |
4.2 BMSCs的鉴定 | 第31页 |
4.3 BMSCs的作用机制 | 第31页 |
4.4 BMSCs移植途径 | 第31-32页 |
4.5 移植骨髓间充质干细胞向脊髓损伤部位迁徙趋化机制 | 第32-36页 |
第2章 大鼠BMSCs的分离和鉴定 | 第36-42页 |
1 材料和方法 | 第36-38页 |
1.1 实验材料 | 第36-37页 |
1.2 实验方法 | 第37-38页 |
1.3 统计学分析 | 第38页 |
2 实验结果 | 第38-40页 |
2.1 形态学观察 | 第38-39页 |
2.2 生长曲线 | 第39-40页 |
2.3 BMSCs干细胞标记 | 第40页 |
3 讨论 | 第40-42页 |
第3章 离体实验观察BMSCs与脊髓损伤组织的相互作用 | 第42-60页 |
第1节 损伤脊髓匀浆上清对骨髓间充质干细胞分泌神经营养因子的影响 | 第43-51页 |
1 材料和方法 | 第43-46页 |
1.1 常用试剂和仪器 | 第43-44页 |
1.2 实验方法 | 第44-46页 |
2 实验结果 | 第46-49页 |
2.1 正常和损伤的脊髓匀浆上清液对BMSCs增殖分化的影响 | 第46-47页 |
2.2 正常和损伤的脊髓匀浆上清液对BMSCs表达PLP、BDNF的影响 | 第47-48页 |
2.3 正常和损伤的脊髓匀浆上清对BMSCs的PLPmRNA、BDNF mRNA表达 | 第48-49页 |
3 讨论 | 第49-51页 |
第2节 骨髓间充质干细胞对损伤脊髓神经元生长存活的影响 | 第51-55页 |
1 材料和方法 | 第51-52页 |
1.1 常用仪器和试剂 | 第51页 |
1.2 实验方法 | 第51-52页 |
2 结果 | 第52-53页 |
2.1 BMSCs对背根神经结神经元存活的影响 | 第52-53页 |
3 讨论 | 第53-55页 |
第3节 神经营养因子基因转染对体外培养脊髓神经元存活和分化的影响 | 第55-60页 |
1 材料与方法 | 第55-56页 |
1.1 实验动物与器材 | 第55页 |
1.2 脊髓背根神经节神经元分离 | 第55页 |
1.3 实验分组 | 第55页 |
1.4 免疫荧光染色 | 第55页 |
1.5 统计学分析 | 第55-56页 |
2 结果 | 第56-57页 |
2.1 形态学观察 | 第56页 |
2.2 神经元细胞免疫荧光染色 | 第56页 |
2.3 神经营养因子对脊髓神经元存活的影响 | 第56-57页 |
2.4 NTs转染后不同时间脊髓神经元存活的变化 | 第57页 |
3 讨论 | 第57-60页 |
第4章 BMSCs移植对脊髓损伤修复的影响 | 第60-94页 |
第1节 BMSCs体外标记 | 第60-64页 |
1 材料和方法 | 第60-61页 |
1.1 常用试剂和仪器 | 第60-61页 |
1.2 实验方法 | 第61页 |
2 结果 | 第61-62页 |
2.1 CM-Dil细胞标记率观察 | 第61-62页 |
2.2 CM-Dil标记对细胞增殖的影响 | 第62页 |
3 讨论 | 第62-64页 |
第2节 BMSCs移植及直流电刺激对脊髓损伤修复的影响 | 第64-78页 |
1 材料和方法 | 第64-69页 |
1.1 常用试剂和仪器 | 第64-65页 |
1.2 实验方法 | 第65-69页 |
2 结果 | 第69-74页 |
2.1 大鼠脊髓功能恢复BBB评分结果 | 第69页 |
2.2 神经电传导功能 | 第69-70页 |
2.3 HE染色结果 | 第70-71页 |
2.4 免疫组化染色结果 | 第71-74页 |
3 讨论 | 第74-78页 |
3.1 造模技术的脊椎破坏方法改进 | 第74-75页 |
3.2 脊髓功能的评价 | 第75-78页 |
第3节 BMSCs对脊髓损伤趋向性 | 第78-94页 |
1 材料和方法 | 第78-84页 |
1.1 常用仪器和试剂 | 第78-79页 |
1.2 实验方法 | 第79-84页 |
2 结果 | 第84-91页 |
2.1 BMSCs在脊髓损伤部位聚集的观察 | 第84-91页 |
3 讨论 | 第91-94页 |
第5章 结论 | 第94-95页 |
本研究创新点 | 第95-96页 |
参考文献 | 第96-110页 |
作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第110-111页 |
致谢 | 第111页 |