| 致谢 | 第9-11页 |
| 摘要 | 第11-13页 |
| Abstract | 第13-14页 |
| 第一章 昆虫体内的毒草型乙酰胆碱及其受体 | 第15-24页 |
| 1 引言 | 第15-16页 |
| 2 合成与分解 | 第16页 |
| 3 储存、释放与再吸收 | 第16-17页 |
| 4 分布 | 第17-18页 |
| 5 生理功能 | 第18-19页 |
| 6 毒蕈型乙酰胆碱受体 | 第19-23页 |
| 6.1 信号转导途径 | 第19-21页 |
| 6.2 药理学性质 | 第21-22页 |
| 6.3 受体的生理功能 | 第22-23页 |
| 7 展望 | 第23-24页 |
| 第二章 昆虫体内的多巴胺及其受体 | 第24-34页 |
| 1 引言 | 第24-25页 |
| 2 合成与分解 | 第25-26页 |
| 3 储存、释放与再吸收 | 第26-28页 |
| 4 分布 | 第28页 |
| 5 生理功能 | 第28-30页 |
| 6 多巴胺受体 | 第30-32页 |
| 6.1 信号转导途径 | 第30-31页 |
| 6.2 药理学性质 | 第31-32页 |
| 6.3 受体的生理功能 | 第32页 |
| 7 展望 | 第32-34页 |
| 第三章 CG12796的信号通路和药理学研究 | 第34-60页 |
| 1 引言 | 第34-35页 |
| 2 材料与方法 | 第35-48页 |
| 2.1 供试昆虫 | 第35页 |
| 2.2 RNA抽提 | 第35-36页 |
| 2.3 CG12796 cDNA的克隆 | 第36-38页 |
| 2.3.1 RT-PCR | 第36-37页 |
| 2.3.2 CG12796 cDNA序列的获得 | 第37-38页 |
| 2.4 PCR产物的纯化 | 第38-39页 |
| 2.5 目的片段与克隆载体连接 | 第39页 |
| 2.6 连接产物的转化、鉴定和测序 | 第39-40页 |
| 2.6.1 连接产物的转化 | 第39页 |
| 2.6.2 转化子的鉴定和测序 | 第39-40页 |
| 2.7 质粒DNA的抽提 | 第40-41页 |
| 2.8 pcDNA3-CG12796融合质粒的构建 | 第41-42页 |
| 2.9 多重序列比对和进化树分析 | 第42-43页 |
| 2.10 定量PCR | 第43-44页 |
| 2.11 细胞培养及转染 | 第44-45页 |
| 2.12 Western blotting | 第45-46页 |
| 2.13 免疫细胞化学 | 第46页 |
| 2.14 Ca~(2+)测定 | 第46-47页 |
| 2.15 cAMP测定 | 第47-48页 |
| 3 结果与分析 | 第48-58页 |
| 3.1 CG12796 cDNA的克隆及序列分析 | 第48-53页 |
| 3.2 CG12796的定量PCR | 第53-54页 |
| 3.3 免疫细胞化学 | 第54页 |
| 3.4 CG12796在CHO-K1细胞上的表达 | 第54-58页 |
| 4 讨论 | 第58-60页 |
| 第四章 CG13579的信号通路和药理学研究 | 第60-72页 |
| 1 引言 | 第60页 |
| 2 材料与方法 | 第60-63页 |
| 2.1 供试昆虫 | 第60页 |
| 2.2 RNA抽提 | 第60-61页 |
| 2.3 克隆CG13579 cDNA序列全长 | 第61页 |
| 2.4 PCR产物纯化、目的片段与克隆载体的连接及连接产物的转化、鉴定和测序 | 第61页 |
| 2.5 pcDNA3-CG13579融合质粒的构建 | 第61-62页 |
| 2.6 定量PCR | 第62页 |
| 2.7 细胞培养及转染 | 第62页 |
| 2.8 Ca~(2+)测定 | 第62页 |
| 2.9 cAMP测定 | 第62-63页 |
| 3 结果与分析 | 第63-71页 |
| 3.1 CG13579 cDNA的克隆及序列分析 | 第63-68页 |
| 3.2 CG13579的定量PCR | 第68-69页 |
| 3.3 CG13579在HEK-293细胞上的表达 | 第69-71页 |
| 4 讨论 | 第71-72页 |
| 总结 | 第72-73页 |
| 1 本研究的创新之处 | 第72页 |
| 2 本研究存在的问题 | 第72页 |
| 3 今后的研究方向 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-85页 |
| 作者简历 | 第85页 |
