| 中英縮写对照 | 第8-10页 |
| 研究背景 | 第10-15页 |
| 参考文献 | 第13-15页 |
| 中文摘要 | 第15-17页 |
| 英文摘要 | 第17-19页 |
| 第1部分 抑制CTGF表达调控小鼠心肌梗死后心肌纤维化的作用观察 | 第20-50页 |
| 1 前言 | 第20-21页 |
| 2 材料和方法 | 第21-36页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-23页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第21页 |
| 2.1.2 实验试剂与仪器 | 第21-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-36页 |
| 2.2.1 小鼠心肌梗死模型的建立 | 第23-25页 |
| 2.2.2 动物分组及药物干预 | 第25页 |
| 2.2.3 心脏超声检测 | 第25-26页 |
| 2.2.4 苏木精-伊红病理染色 | 第26-27页 |
| 2.2.5 心肌胶原纤维Masson病理染色 | 第27-28页 |
| 2.2.6 心肌CTGF免疫组化染色 | 第28-29页 |
| 2.2.7 胶原纤维羟脯氨酸量测定 | 第29-30页 |
| 2.2.8 CTGF mRNA及TGF-β_1mRNA表达半定量RT-PCR检测 | 第30-33页 |
| 2.2.9 CTGF蛋白表达Western blot检测 | 第33-35页 |
| 2.2.10 统计学分析 | 第35-36页 |
| 3 结果 | 第36-44页 |
| 3.1 心脏超声检测各组小鼠心脏形态及心脏功能指标变化 | 第36-38页 |
| 3.2 心脏组织形态学检查 | 第38-40页 |
| 3.2.1 各组小鼠HE染色病理学变化 | 第38-39页 |
| 3.2.2 各组小鼠Masson染色胶原纤维浸润程度 | 第39页 |
| 3.2.3 各组小鼠CTGF免疫组化阳性表达情况 | 第39-40页 |
| 3.3 各组小鼠羟脯氨酸测定结果 | 第40-41页 |
| 3.4 各组CTGF mRNA及TGF-β_1 mRNA RT-PCR检测结果 | 第41-42页 |
| 3.4.1 CTGF mRNA RT-PCR检测结果 | 第41-42页 |
| 3.4.2 TGF-β_1 mRNA R-PCR检测结果 | 第42页 |
| 3.5 各组CTGF蛋白western blot检测结果 | 第42-44页 |
| 4 讨论 | 第44-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
| 第Ⅱ部分 激活cAMP信号通路调控小鼠心肌成纤维细胞结缔组织生长因子的表达 | 第50-78页 |
| 1 前言 | 第50-51页 |
| 2 材料和方法 | 第51-58页 |
| 2.1 实验材料 | 第51-53页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第51页 |
| 2.1.2 实验试剂与仪器 | 第51-53页 |
| 2.2 实验方法 | 第53-58页 |
| 2.2.1 MCFs原代分离和培养 | 第53-54页 |
| 2.2.2 MCFs免疫荧光鉴定 | 第54-55页 |
| 2.2.3 MCFs活力MTT测定 | 第55页 |
| 2.2.4 MCFs胞内cAMP浓度酶联免疫分析(ELISA)检测 | 第55页 |
| 2.2.5 MCFs CTGF免疫组化染色 | 第55-56页 |
| 2.2.6 MCFs CTGF蛋白表达Western blot检测 | 第56-57页 |
| 2.2.7 MCFs CTGF mRNA RT-PCR检测 | 第57页 |
| 2.2.8 统计学分析 | 第57-58页 |
| 3 结果 | 第58-73页 |
| 3.1 细胞形态学观察及生长特性 | 第58-60页 |
| 3.2 MCFs免疫荧光鉴定 | 第60页 |
| 3.3 TGF-β_1刺激MCFs高表达CTGF | 第60-62页 |
| 3.4 Forskolin提高MCFs胞内cAMP浓度水平抑制CTGF的表达 | 第62-66页 |
| 3.5 PD98509抑制p44/42 MAPK磷酸化水平后相关信号分子表达变化及CTGF表达变化 | 第66-69页 |
| 3.6 Rp-cAMPS抑制PKA后相关信号分子表达变化及CTGF表达变化 | 第69-73页 |
| 4 讨论 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-78页 |
| 结论 | 第78-79页 |
| 展望 | 第79-80页 |
| 综述 | 第80-96页 |
| 参考文献 | 第89-96页 |
| 附录 攻读学位期间发表论文目录 | 第96-97页 |
| 致谢 | 第97-98页 |
