| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 前言 | 第9-13页 |
| 1.1 艾纳香研究现状 | 第9-10页 |
| 1.2 转录组测序技术的研究 | 第10页 |
| 1.3 研究目的与意义 | 第10-13页 |
| 第二章 茉莉酸甲酯（MeJA）与水杨酸（SA）对艾纳香叶片L-龙脑含量的影响 | 第13-20页 |
| 2.1 材料与方法 | 第14-16页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第14页 |
| 2.1.2 试剂 | 第14页 |
| 2.1.3 仪器 | 第14页 |
| 2.1.4 方法 | 第14-16页 |
| 2.2 结果与分析 | 第16-18页 |
| 2.2.1 艾纳香不同叶位叶片在不同浓度MeJA处理后L-龙脑含量随时间的变化规律 | 第16-17页 |
| 2.2.2 艾纳香不同叶位叶片在不同浓度SA处理后L-龙脑含量随时间的变化规律 | 第17-18页 |
| 2.3 本章小结 | 第18-20页 |
| 第三章 茉莉酸甲酯（MeJA）与水杨酸（SA）对艾纳香抗氧化酶活力的影响 | 第20-31页 |
| 3.1 材料与方法 | 第20-21页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第20-21页 |
| 3.1.2 试剂 | 第21页 |
| 3.1.3 仪器 | 第21页 |
| 3.2 方法 | 第21-23页 |
| 3.2.1 试剂配制与材料处理 | 第21-22页 |
| 3.2.2 酶活力测定 | 第22-23页 |
| 3.3 结果与分析 | 第23-29页 |
| 3.3.1 SA不同浓度对艾纳香抗氧化酶活性的影响 | 第23-26页 |
| 3.3.2 MeJA不同浓度对艾纳香抗氧化酶活性的影响 | 第26-29页 |
| 3.4 本章小结 | 第29-31页 |
| 第四章 艾纳香花和叶片的转录组数据组装及基因功能注释 | 第31-40页 |
| 4.1 材料与方法 | 第31-32页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第31页 |
| 4.1.2 RNA的提取与分离 | 第31-32页 |
| 4.1.3 转录组数据的获得 | 第32页 |
| 4.1.4 原始数据处理及生物信息学分析 | 第32页 |
| 4.2 结果与分析 | 第32-38页 |
| 4.2.1 转录组数据组装 | 第32-33页 |
| 4.2.2 转录组数据拼接结果及基因预测 | 第33-34页 |
| 4.2.3 基因功能注释 | 第34-38页 |
| 4.3 本章小结 | 第38-40页 |
| 第五章 艾纳香萜类物质生物合成途径分析 | 第40-50页 |
| 5.1 材料与方法 | 第40-41页 |
| 5.1.1 材料 | 第40页 |
| 5.1.2 方法 | 第40-41页 |
| 5.2 结果与分析 | 第41-48页 |
| 5.2.1 转录组测序结果 | 第41页 |
| 5.2.2 代谢途径与涉及基因 | 第41-43页 |
| 5.2.3 萜类骨架代谢途径分析 | 第43-45页 |
| 5.2.4 单萜生物合成途径分析 | 第45-46页 |
| 5.2.5 二萜生物合成途径分析 | 第46-47页 |
| 5.2.6 三萜、倍半萜生物合成途径分析 | 第47-48页 |
| 5.2.7 艾纳香萜类合成途径中的关键酶分析 | 第48页 |
| 5.3 本章小结 | 第48-50页 |
| 第六章 艾纳香BbGPPS基因的克隆及序列分析 | 第50-61页 |
| 6.1 材料与方法 | 第50-51页 |
| 6.1.1 材料 | 第50页 |
| 6.1.2 试剂 | 第50页 |
| 6.1.3 叶片总RNA提取及BbGPPS全长cDNA的克隆 | 第50-51页 |
| 6.1.4 BbGPPS基因的测序与分析 | 第51页 |
| 6.1.5 数据分析 | 第51页 |
| 6.2 结果与分析 | 第51-59页 |
| 6.2.1 BbGPPS cDNA序列分析 | 第51-52页 |
| 6.2.2 BbGPPS氨基酸序列分析 | 第52-53页 |
| 6.2.3 BbGPPS跨膜区、信号肽、亚细胞定位分析 | 第53-54页 |
| 6.2.4 BbGPPS疏水性分析 | 第54页 |
| 6.2.5 BbGPPS序列比对 | 第54-56页 |
| 6.2.6 蛋白质二级结构预测和三维建模 | 第56-57页 |
| 6.2.7 BbGPPS与其他物种GPPS间系统进化分析 | 第57-59页 |
| 6.3 本章小结 | 第59-61页 |
| 第七章 艾纳香BbGGPS基因的克隆及序列分析 | 第61-72页 |
| 7.1 材料与方法 | 第61-62页 |
| 7.1.1 植物材料 | 第61页 |
| 7.1.2 试剂 | 第61页 |
| 7.1.3 总RNA提取及BbGGPS全长cDNA的克隆 | 第61-62页 |
| 7.1.4 BbGGPS基因的测序与分析 | 第62页 |
| 7.1.5 艾纳香BbGGPS基因的生物信息学分析 | 第62页 |
| 7.2 结果与分析 | 第62-70页 |
| 7.2.1 艾纳香BbGGPS基因的克隆 | 第62-63页 |
| 7.2.2 BbGGPS氨基酸序列分析 | 第63-66页 |
| 7.2.3 多序列比对与系统进化分析 | 第66-70页 |
| 7.3 本章小结 | 第70-72页 |
| 第八章 q-PCR检测GPPS基因与TPS基因表达对MeJA处理的响应 | 第72-79页 |
| 8.1 材料与方法 | 第72-74页 |
| 8.1.1 植物材料 | 第72页 |
| 8.1.2 主要试剂 | 第72-73页 |
| 8.1.3 主要仪器 | 第73页 |
| 8.1.4 试验方法 | 第73-74页 |
| 8.2 结果与分析 | 第74-77页 |
| 8.2.1 引物设计与序列 | 第74页 |
| 8.2.2 常规PCR结果 | 第74页 |
| 8.2.3 目的基因与内参基因的熔解曲线及标准曲线 | 第74-76页 |
| 8.2.4 GPPS基因表达分析 | 第76-77页 |
| 8.2.5 TPS基因的表达分析 | 第77页 |
| 8.3 本章小结 | 第77-79页 |
| 第九章 结果、结论与讨论 | 第79-83页 |
| 9.1 结果 | 第79-81页 |
| 9.1.1 外源诱导剂的筛选 | 第79-80页 |
| 9.1.2 艾纳香转录组测序 | 第80页 |
| 9.1.3 艾纳香萜类合成基因的克隆 | 第80-81页 |
| 9.1.4 艾纳香萜类合成途径预测 | 第81页 |
| 9.1.5 GPPS基因和TPS基因的q-PCR表达分析 | 第81页 |
| 9.2 结论与讨论 | 第81-83页 |
| 参考文献 | 第83-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
| 附录 | 第89-90页 |
