| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 目录 | 第8-10页 |
| 英文缩略语表 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-14页 |
| 材料与方法 | 第14-24页 |
| 1 材料 | 第14-16页 |
| 1.1 实验动物 | 第14页 |
| 1.2 主要实验试剂 | 第14-15页 |
| 1.3 主要实验仪器 | 第15-16页 |
| 2 方法 | 第16-23页 |
| 2.1 实验动物分组 | 第16页 |
| 2.2 动物模型的建立 | 第16页 |
| 2.3 实验动物标本的留取 | 第16-18页 |
| 2.4 大鼠海马组织病理切片的制备 | 第18-19页 |
| 2.5 免疫组织化学定位 GLT-1 表达 | 第19页 |
| 2.6 高效液相检测大鼠海马组织 ATP 含量 | 第19页 |
| 2.7 高效液相荧光法检测大鼠海马组织 Glu 含量 | 第19-20页 |
| 2.8 Western blot 检测海马组织 GLT-1 的表达 | 第20-21页 |
| 2.9 RT-PCR 检测海马组织 GLT-1mRNA 表达 | 第21-23页 |
| 3 统计学处理 | 第23-24页 |
| 结果 | 第24-32页 |
| 1 各组大鼠海马组织病理学观察 | 第24-25页 |
| 1.1 光学显微镜下各组大鼠海马组织病理改变 | 第24-25页 |
| 1.2 透射电镜下各组大鼠海马组织超微结构变化 | 第25页 |
| 2 高效液相检测大鼠海马组织 ATP 含量 | 第25-27页 |
| 2.1 ATP 的高效液相回归方程、线性范围及检测限 | 第25页 |
| 2.2 各组大鼠海马组织 ATP 高效液相色谱图 | 第25-26页 |
| 2.3 各组大鼠海马组织 ATP 含量比较 | 第26-27页 |
| 3 高效液相荧光法测定大鼠海马组织 Glu 含量 | 第27-29页 |
| 3.1 高效液相 Glu 回归方程、线性关系及检测限 | 第27页 |
| 3.2 各组大鼠海马 Glu 高效液相色谱图 | 第27-28页 |
| 3.3 各组大鼠海马 Glu 浓度比较 | 第28-29页 |
| 4 免疫组织化学方法定位大鼠海马组织 GLT-1 的表达 | 第29页 |
| 5 Western blot 检测海马组织 GLT-1 的表达 | 第29-30页 |
| 6 RT-PCR 检测海马组织 GLT-1 mRNA 的表达 | 第30-32页 |
| 讨论 | 第32-37页 |
| 1 大鼠 CA 模型的复制及干预方法的选择 | 第32-33页 |
| 2 UTI 对复苏大鼠脑损伤病理生理变化的影响 | 第33-35页 |
| 2.1 UTI 对复苏大鼠海马组织能量代谢的影响 | 第34页 |
| 2.2 UTI 对复苏大鼠海马 GLT-1 表达的影响 | 第34-35页 |
| 2.3 UTI 对复苏大鼠海马 Glu 的影响 | 第35页 |
| 2.4 UTI 对复苏大鼠海马形态学改变的影响 | 第35页 |
| 3 小结与展望 | 第35-37页 |
| 结论 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-42页 |
| 综述 | 第42-47页 |
| 参考文献 | 第45-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 作者简介及在学期间发表文章 | 第48-49页 |
| 导师评阅表 | 第49页 |
