| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 符号说明 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 研究现状、成果 | 第12-14页 |
| 研究目的、方法 | 第14-15页 |
| 一、MCP-1对VEGI表达的影响 | 第15-30页 |
| 1.1 对象和方法 | 第15-22页 |
| 1.1.1 组织和细胞 | 第15页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第15-16页 |
| 1.1.3 主要仪器和设备 | 第16页 |
| 1.1.4 主要试剂的配制 | 第16-17页 |
| 1.1.5 免疫组化检测正常卵巢、卵巢癌中CD4~+T细胞浸润情况和FIGO分期Ⅲ/Ⅳ期CD4~+CD25~+FOXP3~+Treg细胞分布情况 | 第17-19页 |
| 1.1.6 免疫磁珠分选CD4~+CD25~+Treg细胞 | 第19页 |
| 1.1.7 细胞培养及冻存 | 第19-20页 |
| 1.1.8 ELISA检测重组MCP-1和Treg细胞培养基对VEGI生成的影响 | 第20-21页 |
| 1.1.9 细胞因子抗体芯片实验 | 第21-22页 |
| 1.1.10 统计方法 | 第22页 |
| 1.2 结果 | 第22-27页 |
| 1.2.1 正常卵巢、卵巢癌组织CD4~+T细胞浸润情况及FIGO分期Ⅲ/Ⅳ期CD4~+CD25~+FOXP3~+Treg细胞分布情况 | 第22-24页 |
| 1.2.2 不同浓度重组MCP-1和Treg细胞培养基对HUVECs分泌VEGI的影响 | 第24-26页 |
| 1.2.3 细胞因子抗体芯片结果 | 第26-27页 |
| 1.3 讨论 | 第27-29页 |
| 1.4 小结 | 第29-30页 |
| 二、VEGI对卵巢癌生长的影响 | 第30-40页 |
| 2.1 对象和方法 | 第30-32页 |
| 2.1.1 动物及细胞培养 | 第30页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第30页 |
| 2.1.3 主要仪器和设备 | 第30-31页 |
| 2.1.4 主要试剂的配制 | 第31页 |
| 2.1.5 腹腔注射VEGI重组蛋白实验和免疫组织化学 | 第31-32页 |
| 2.1.6 皮下注射VEGI-shRNA实验和免疫组织化学 | 第32页 |
| 2.1.7 统计方法 | 第32页 |
| 2.2 结果 | 第32-35页 |
| 2.2.1 观测腹腔注射VEGI重组蛋白对小鼠卵巢癌生长的影响 | 第32-33页 |
| 2.2.2 免疫组化检测腹腔注射VEGI重组蛋白对小鼠卵巢癌血管生成的影响 | 第33-34页 |
| 2.2.3 观测皮下注射VEGI-shRNA对小鼠卵巢癌生长的影响 | 第34页 |
| 2.2.4 免疫组化检测皮下注射VEGI-shRNA对小鼠卵巢癌血管生成的影响 | 第34-35页 |
| 2.3 讨论 | 第35-39页 |
| 2.4 小结 | 第39-40页 |
| 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-47页 |
| 发表论文和参加科研情况 | 第47-48页 |
| 综述 | 第48-60页 |
| 综述参考文献 | 第55-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
