中文摘要 | 第6-8页 |
Abstract | 第8-9页 |
缩略词及中英文对照表 | 第10-11页 |
上篇 文献综述 | 第11-20页 |
1 概述 | 第11页 |
2 黄芩苷简介 | 第11-12页 |
2.1 黄芩苷的理化性质 | 第11-12页 |
2.2 黄芩苷的药理作用 | 第12页 |
3 黄芩苷常用分析方法 | 第12-15页 |
3.1 高效液相色谱法(HPLC) | 第12-13页 |
3.2 薄层色谱法(TLC) | 第13页 |
3.3 高效毛细管电泳法(HPCE) | 第13页 |
3.4 紫外分光光度法(UV) | 第13-14页 |
3.5 液相色谱-质谱联用(LC-MS) | 第14页 |
3.6 酶联免疫分析法(ELISA) | 第14-15页 |
4 ELISA快速检测试剂盒的技术要点 | 第15-17页 |
4.1 单抗纯化 | 第15-16页 |
4.2 ELISA方法的优化与建立 | 第16页 |
4.3 ELISA检测试剂盒质量控制 | 第16-17页 |
5 本研究的目的及意义 | 第17-18页 |
6 本研究的内容及方法 | 第18-20页 |
6.1 研究内容 | 第18-19页 |
6.2 技术路线 | 第19-20页 |
下篇 实验研究 | 第20-62页 |
实验一 黄芩苷间接竞争ELISA的优化与建立 | 第20-43页 |
摘要 | 第20页 |
1 前言 | 第20页 |
2 材料和方法 | 第20-28页 |
2.1 实验材料 | 第21-22页 |
2.1.1 黄芩苷腹水的获得 | 第21页 |
2.1.2 实验仪器和试剂 | 第21页 |
2.1.3 主要试剂配制 | 第21-22页 |
2.2 实验方法 | 第22-28页 |
2.2.1 BAL腹水纯化及鉴定 | 第22-25页 |
2.2.2 间接竞争ELISA方法的优化与建立 | 第25-28页 |
3 结果与讨论 | 第28-43页 |
3.1 BAL腹水纯化及鉴定结果 | 第28-32页 |
3.1.1 亚型鉴定结果 | 第28-29页 |
3.1.2 蛋白G柱纯化结果 | 第29页 |
3.1.3 纯化前后腹水比较 | 第29-31页 |
3.1.4 电泳纯度鉴定结果 | 第31-32页 |
3.2 IcELISA优化结果 | 第32-43页 |
3.2.1 棋盘法结果 | 第32页 |
3.2.2 最佳包被模式 | 第32-34页 |
3.2.3 最佳封闭液 | 第34页 |
3.2.4 单抗最佳工作浓度 | 第34-35页 |
3.2.5 最佳竞争反应时间 | 第35页 |
3.2.6 最佳显色时间 | 第35-36页 |
3.2.7 竞争抗原和单抗的最佳容量配比 | 第36-37页 |
3.2.8 最佳缓冲体系 | 第37-41页 |
3.2.9 标准曲线的建立 | 第41-42页 |
3.2.10 回收率试验 | 第42-43页 |
实验二 黄芩苷ELISA试剂盒的研制与应用 | 第43-62页 |
摘要 | 第43页 |
1 前言 | 第43页 |
2 材料与方法 | 第43-50页 |
2.1 实验材料 | 第43-44页 |
2.1.1 实验小鼠 | 第43-44页 |
2.1.2 实验仪器和试剂 | 第44页 |
2.2 实验方法 | 第44-50页 |
2.2.1 试剂盒稳定性研究 | 第44-46页 |
2.2.2 BAL的空白基质添加回收实验 | 第46页 |
2.2.3 试剂盒的组装 | 第46-48页 |
2.2.4 实际样品检测 | 第48-50页 |
3 结果与讨论 | 第50-62页 |
3.1 稳定性试验 | 第50-53页 |
3.1.1 单抗保护剂 | 第50-51页 |
3.1.2 酶标板保存 | 第51-52页 |
3.1.3 批内重现性 | 第52-53页 |
3.1.4 批间重现性 | 第53页 |
3.2 空白样品回收率试验 | 第53-57页 |
3.2.1 空白样品标准曲线的建立 | 第54-55页 |
3.2.2 板内差和板间差 | 第55-57页 |
3.2.3 添加回收率试验 | 第57页 |
3.3 不同样品测定结果 | 第57-62页 |
3.3.1 黄芩药材中黄芩苷含量及与HPLC相关性分析 | 第57-58页 |
3.3.2 双黄连口服液中黄芩苷含量及与HPLC相关性分析 | 第58页 |
3.3.3 生物样品中黄芩苷含量测定 | 第58-62页 |
黄芩苷ELISA快速检测试剂盒雏形 | 第62-63页 |
小结与展望 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-68页 |
致谢 | 第68-69页 |
个人简历 | 第69-70页 |
附录 | 第70-80页 |