致谢 | 第5-6页 |
摘要 | 第6-8页 |
Abstract | 第8-9页 |
第1章 研究背景 | 第14-21页 |
1.1 硫酸软骨素的简介 | 第14页 |
1.1.1 硫酸软骨素组成 | 第14页 |
1.2 硫酸软骨素的功能 | 第14-16页 |
1.2.1 具有防止凝血、防止血栓、预防动脉粥样硬化和心血管疾病的功能 | 第15页 |
1.2.2 具有预防骨关节疾病的功能 | 第15页 |
1.2.3 保护眼角膜的作用 | 第15页 |
1.2.4 具有抗肿瘤、抗炎、免疫调节的作用 | 第15-16页 |
1.2.5 免疫调节作用 | 第16页 |
1.3 作用机制 | 第16-17页 |
1.3.1 抗炎机制 | 第16页 |
1.3.2 促进细胞分裂、增殖 | 第16页 |
1.3.3 抑制黑色素瘤生长的机制 | 第16-17页 |
1.4 淋巴细胞作用机制 | 第17-19页 |
1.5 黑色素瘤 | 第19-20页 |
1.6 流式细胞术 | 第20-21页 |
第2章 硫酸软骨素的提取、纯化、鉴定 | 第21-24页 |
2.1 硫酸软骨素的提取 | 第21-22页 |
2.1.1 硫酸软骨素的提取方法 | 第21页 |
2.1.2 硫酸软骨素的纯化、分离 | 第21页 |
2.1.3 硫酸软骨素的检测 | 第21-22页 |
2.2 硫酸软骨素的提取 | 第22-24页 |
2.2.1 提取材料 | 第22页 |
2.2.2 实验仪器 | 第22页 |
2.2.3 提取步骤 | 第22-23页 |
2.2.4 红外光谱定量分析 | 第23-24页 |
第3章 材料和方法 | 第24-30页 |
3.1 实验材料 | 第24页 |
3.1.1 实验动物 | 第24页 |
3.1.2 实验物品 | 第24页 |
3.1.3 实验器皿、仪器 | 第24页 |
3.2 实验方法 | 第24-25页 |
3.2.1 体外培养小鼠脾脏细胞的培养 | 第24-25页 |
3.2.2 酶联免疫吸附试ELISA检测细胞上清中IFN-γ的含量 | 第25页 |
3.3 MTT实验 | 第25-26页 |
3.3.1 小鼠黑色素瘤细胞B16F10的培养 | 第25-26页 |
3.3.2 小鼠黑色素瘤B16F10 MTT实验 | 第26页 |
3.4 黑色素瘤小鼠模型的建立 | 第26-27页 |
3.4.1 调节细胞浓度,进行建模 | 第26-27页 |
3.5 黑色素瘤小鼠模型建立后处理 | 第27页 |
3.5.1 解剖小鼠、取样进行分析 | 第27页 |
3.6 流式细胞术检测 | 第27-28页 |
3.6.1 流式细胞术 | 第27-28页 |
3.7 RNA样本的提取 | 第28页 |
3.7.1 小鼠RNA的提取 | 第28页 |
3.8 电泳 | 第28-29页 |
3.8.1 电泳检测RNA | 第28-29页 |
3.9 统计学处理 | 第29-30页 |
第4章 结果与分析 | 第30-54页 |
4.1 硫酸软骨素刺激后脾脏细胞的变化 | 第30-32页 |
4.1.1 淋巴细胞数目的变化 | 第30-32页 |
4.2 硫酸软骨素对黑色素瘤模型小鼠的影响 | 第32-36页 |
4.2.1 硫酸软骨素对黑色素瘤模型小鼠脾脏细胞的影响 | 第33页 |
4.2.2 硫酸软骨素对黑色素瘤模型小鼠血液中淋巴细胞百分率的影响 | 第33页 |
4.2.3 硫酸软骨素对黑色素瘤模型小鼠肺浸润性淋巴细胞的影响 | 第33-34页 |
4.2.4 小鼠体重的变化 | 第34-36页 |
4.3 流式细胞仪分析黑色素瘤模型小鼠淋巴细胞数目变化 | 第36-43页 |
4.3.1 脾脏细胞中CD8T细胞百分率的变化 | 第36-37页 |
4.3.2 脾脏细胞中CD4T细胞百分率的变化 | 第37-38页 |
4.3.3 脾脏细胞中NKT细胞百分率的变化 | 第38-39页 |
4.3.4 肺浸润性淋巴细胞中CD8T细胞百分率的变化 | 第39-40页 |
4.3.5 肺浸润性淋巴细胞中CD4T细胞百分率的变化 | 第40-41页 |
4.3.6 肺浸润性淋巴细胞中NKT细胞百分率的变化 | 第41-43页 |
4.4 MTT实验 | 第43页 |
4.5 高通量测序结果 | 第43-54页 |
4.5.1 lncRNA与mRNA的比较分析 | 第43-47页 |
4.5.1.1 lncRNA的筛选 | 第43-45页 |
4.5.1.2 lncRNA和mRNA外显子个数的密度分布 | 第45页 |
4.5.1.3 lncRNA和mRNA序列长度的密度分布 | 第45-46页 |
4.5.1.4 lncRNA和mRNA的ORF长度的密度分布 | 第46-47页 |
4.5.2 样本间的lncRNA的差异 | 第47-48页 |
4.5.3 两个样本间基因的差异 | 第48-50页 |
4.5.4 lncRNA对mRNA的调控作用 | 第50-51页 |
4.5.5 六种海产品中提取硫酸软骨素的结果 | 第51-54页 |
4.5.5.1 六种海产品中硫酸软骨素的提取率 | 第51页 |
4.5.5.2 红外光谱分析 | 第51-54页 |
第5章 讨论 | 第54-56页 |
5.1 硫酸软骨素的机体的免疫调控作用 | 第54-55页 |
5.2 高通量测序结果 | 第55-56页 |
参考文献 | 第56-64页 |
附录A | 第64-65页 |
附录B | 第65-66页 |
附录C | 第66-67页 |
附录D | 第67-68页 |
附录E | 第68-69页 |
附录F | 第69-70页 |
附录G | 第70-71页 |
作者简历 | 第71页 |