| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 英文缩写及中英文对照表 | 第10-11页 |
| 一 引言 | 第11-22页 |
| 1.1 乙烯的合成和乙烯信号传导途径 | 第11-12页 |
| 1.1.1 乙烯 | 第11页 |
| 1.1.2 乙烯的合成 | 第11页 |
| 1.1.3 乙烯信号传导途径 | 第11-12页 |
| 1.2 植物转录因子 | 第12-15页 |
| 1.2.1 转录因子 | 第12页 |
| 1.2.2 转录因子分类 | 第12-13页 |
| 1.2.3 AP2/ERF转录因子家族 | 第13页 |
| 1.2.4 植物AP2/ERF类转录因子的分布及其数量 | 第13-14页 |
| 1.2.5 AP2/ERF转录因子的作用 | 第14-15页 |
| 1.3 ERF类转录因子 | 第15-18页 |
| 1.3.1 ERF转录因子的结构 | 第16页 |
| 1.3.2 ERF转录因子的调控特点 | 第16-17页 |
| 1.3.3 ERF转录因子研究进展 | 第17-18页 |
| 1.4 果实成熟相关蛋白 | 第18-20页 |
| 1.4.1 ACC合成酶 | 第18页 |
| 1.4.2 ACC氧化酶 | 第18页 |
| 1.4.3 多聚半乳糖醛酸酶 | 第18-19页 |
| 1.4.4 蔗糖合成酶 | 第19页 |
| 1.4.5 扩展蛋白 | 第19页 |
| 1.4.6 苯丙氨酸解氨酶 | 第19页 |
| 1.4.7 酰基转移酶 | 第19-20页 |
| 1.4.8 肉桂醇脱氢酶 | 第20页 |
| 1.5 甜瓜的概述 | 第20-21页 |
| 1.6 本研究的目的与意义 | 第21-22页 |
| 二 实验材料与方法 | 第22-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第22页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第22页 |
| 2.1.2 菌种与质粒 | 第22页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-37页 |
| 2.2.1 引物设计和合成 | 第22-25页 |
| 2.2.2 CMe-ERF1和CMe-ERF2超表达载体的构建 | 第25-27页 |
| 2.2.3 CMe-ERF1和CMe-ERF2基因RNAi载体的构建 | 第27-33页 |
| 2.2.4 农杆菌感受态细胞的制备 | 第33页 |
| 2.2.5 农杆菌感受态细胞的转化 | 第33-34页 |
| 2.2.6 农杆菌质粒提取 | 第34页 |
| 2.2.7 侵染液制备及注射甜瓜果肉 | 第34-35页 |
| 2.2.8 定量PCR检测果实注射部位的基因表达特性分析 | 第35-37页 |
| 三 结果与分析 | 第37-51页 |
| 3.1 超表达载体构建和RNAi载体构建 | 第37-46页 |
| 3.1.1 超表达载体构建 | 第37-39页 |
| 3.1.2 RNAi载体构建 | 第39-46页 |
| 3.2 CMe-ERF1和CMe-ERF2基因瞬时表达 | 第46-47页 |
| 3.3 CMe-ERF1和CMe-ERF2基因的表达分析 | 第47-49页 |
| 3.4 果实成熟相关基因的表达特性分析 | 第49-51页 |
| 四 讨论与结论 | 第51-54页 |
| 4.1 讨论 | 第51-53页 |
| 4.2 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
