| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 符号说明 | 第10-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-16页 |
| 第二章 材料与方法 | 第16-20页 |
| 2.1 实验动物 | 第16页 |
| 2.2 实验动物处理 | 第16页 |
| 2.3 实验处理 | 第16-17页 |
| 2.3.1 冷驯化实验 | 第16-17页 |
| 2.4 实验方法 | 第17-20页 |
| 2.4.1 中缅树鼩脂肪组织mRNA的提取 | 第17页 |
| 2.4.2 石蜡切片的制备 | 第17页 |
| 2.4.3 苏木素-伊红染色切片的制备 | 第17页 |
| 2.4.4 免疫组织化学染色切片的制备 | 第17页 |
| 2.4.5 免疫荧光染色切片的制备 | 第17页 |
| 2.4.6 PET/CT扫描 | 第17-18页 |
| 2.4.7 流式细胞样品制备 | 第18页 |
| 2.4.8 数据处理 | 第18-20页 |
| 第三章 冷驯化对中缅树鼩体重、脂肪组织重量、UCP1基因表达量、血液生理生化指标变化的影响 | 第20-29页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第20-21页 |
| 3.2 结果 | 第21-27页 |
| 3.2.1 体重 | 第21页 |
| 3.2.2 脂肪组织 | 第21-24页 |
| 3.2.3 UCP1基因表达量 | 第24-25页 |
| 3.2.4 血液生理生化指标 | 第25-27页 |
| 3.3 讨论 | 第27-29页 |
| 3.3.1 体重、脂肪组织重量、UCP1基因表达量变化 | 第27-28页 |
| 3.3.2 血液生理生化指标 | 第28-29页 |
| 第四章 冷驯化下中缅树鼩PET/CT扫描成像研究 | 第29-38页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第29-30页 |
| 4.2 结果 | 第30-36页 |
| 4.2.1 FDG药物剂量的筛选 | 第30-32页 |
| 4.2.2 褐色脂肪组织的PET/CT扫描成像 | 第32-34页 |
| 4.2.3 白色脂肪组织的PET/CT扫描成像 | 第34-36页 |
| 4.3 讨论 | 第36-38页 |
| 第五章 冷驯化下中缅树鼩脂肪组织的形态学研究 | 第38-46页 |
| 5.1 实验材料与方法 | 第39页 |
| 5.2 结果 | 第39-45页 |
| 5.2.1 苏木素-伊红染色切片 | 第39-41页 |
| 5.2.2 免疫组织化学染色切片 | 第41-42页 |
| 5.2.3 免疫荧光染色切片 | 第42-45页 |
| 5.3 讨论 | 第45-46页 |
| 第六章 冷驯化下中缅树鼩脂肪细胞的流式分析 | 第46-55页 |
| 6.1 实验材料与方法 | 第46页 |
| 6.2 结果 | 第46-53页 |
| 6.2.1 脂肪细胞样品制备技术探讨 | 第46-50页 |
| 6.2.2 白色脂肪细胞的流式分析 | 第50-52页 |
| 6.2.3 褐色脂肪细胞的流式分析 | 第52-53页 |
| 6.3 讨论 | 第53-55页 |
| 第七章 创新点 | 第55-56页 |
| 第八章 文献综述 | 第56-68页 |
| 8.1 褐色脂肪细胞 | 第59页 |
| 8.2 米色脂肪细胞 | 第59-60页 |
| 8.3 米色脂肪细胞的发育来源 | 第60-61页 |
| 8.4 诱导米色脂肪细胞的因素 | 第61-64页 |
| 8.4.1 PGC-1a控制的脂肪细胞产热活性 | 第61-63页 |
| 8.4.2 Irisin对米色脂肪细胞的激活作用 | 第63-64页 |
| 8.5 褐色和米色脂肪细胞在调节代谢中的作用 | 第64-66页 |
| 8.6 总结与展望 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-77页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文和研究成果 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78页 |