中文摘要 | 第4-10页 |
Abstract | 第10-15页 |
缩略词说明 | 第19-21页 |
第1章 引言 | 第21-23页 |
第2章 综述 | 第23-49页 |
2.1 胃癌的研究进展 | 第23-35页 |
2.1.1 胃癌定义及流行情况 | 第23-25页 |
2.1.2 胃癌的病因 | 第25-30页 |
2.1.3 胃癌的临床表现和治疗 | 第30-35页 |
2.2 自噬的研究进展 | 第35-42页 |
2.2.1 自噬的概述 | 第36-40页 |
2.2.2 自噬的生物学意义 | 第40-42页 |
2.3 自噬调控的研究 | 第42-49页 |
2.3.1 Beclin-1 | 第43-45页 |
2.3.2 Bcl-2 家族 | 第45-46页 |
2.3.3 LC3 | 第46-49页 |
第3章 实验研究 | 第49-97页 |
实验一 临床组织标本 | 第49-76页 |
1 材料方法 | 第49-68页 |
1.1 病例选择 | 第49-51页 |
1.1.1 胃癌TNM分期标准(国际抗癌联盟/美国癌症联合委员会(UICC/AJCC)(2010)) | 第49-50页 |
1.1.2 纳入标准 | 第50页 |
1.1.3 排除标准 | 第50-51页 |
1.1.4 手术方法 | 第51页 |
1.1.5 随访 | 第51页 |
1.2 标本的采集 | 第51页 |
1.3 主要试剂和仪器 | 第51-53页 |
1.3.1 主要试剂 | 第51-52页 |
1.3.2 主要仪器 | 第52-53页 |
1.4 实验方法 | 第53-67页 |
1.4.1 液体试剂的配制: | 第53-56页 |
1.4.2 免疫组化 | 第56-60页 |
1.4.3 Western Blot | 第60-63页 |
1.4.4 实时定量PCR(RT-PCR) | 第63-67页 |
1.4.5 细胞内INF-γ 的流式细胞仪检测分析 | 第67页 |
1.5 统计学分析 | 第67-68页 |
2 结果 | 第68-72页 |
2.1 病人基本信息 | 第68页 |
2.2 胃癌组织标本中Beclin-1 的表达 | 第68-70页 |
2.3 胃癌组织中IFN-γ 的表达 | 第70-72页 |
3 讨论 | 第72-75页 |
4 结论 | 第75-76页 |
实验二 细胞体外实验 | 第76-86页 |
1 材料方法 | 第76-80页 |
1.1 细胞株 | 第76页 |
1.2 主要试剂和仪器 | 第76-78页 |
1.2.1 主要试剂 | 第76-77页 |
1.2.2 主要仪器 | 第77-78页 |
1.3 实验方法 | 第78-79页 |
1.3.1 细胞培养和刺激 | 第78页 |
1.3.2 实时定量PCR(RT-PCR) | 第78页 |
1.3.3 Western Blot | 第78-79页 |
1.3.4 细胞增殖检测(CCK8检测试剂盒) | 第79页 |
1.3.5 细胞凋亡检测(caspase3活性试剂盒) | 第79页 |
1.4 统计学分析 | 第79-80页 |
2 结果 | 第80-83页 |
2.1 BGC-823、MKN-28及GES-1 细胞株中Beclin-1 表达水平 | 第80-81页 |
2.2 胃癌细胞株中IFN-γ 诱导自噬的研究 | 第81页 |
2.3 IFN-γ 诱导自噬激活对胃癌细胞增殖及凋亡的影响 | 第81-83页 |
3 讨论 | 第83-85页 |
4 结论 | 第85-86页 |
实验三 动物体内实验 | 第86-97页 |
1 材料方法 | 第86-89页 |
1.1 实验动物 | 第86页 |
1.2 主要试剂和仪器 | 第86-88页 |
1.2.1 主要试剂 | 第86-87页 |
1.2.2 主要仪器 | 第87-88页 |
1.3 实验方法 | 第88-89页 |
1.3.1 实验动物及饲养 | 第88-89页 |
1.3.2 Western blot检测自噬相关蛋白在动物模型体内表达水平 | 第89页 |
1.4 统计分析 | 第89页 |
2 结果 | 第89-91页 |
2.1 在裸鼠中激活自噬可以抑制移植物的生长 | 第89-91页 |
3 讨论 | 第91-96页 |
4 结论 | 第96-97页 |
第4章 结论 | 第97-99页 |
参考文献 | 第99-111页 |
作者简介 | 第111-113页 |
致谢 | 第113页 |