| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-20页 |
| 1.1 禾谷缢管蚜生物学特性，危害和抗药性 | 第12-14页 |
| 1.1.1 禾谷缢管蚜生物学特性 | 第12页 |
| 1.1.2 禾谷缢管蚜的危害 | 第12-13页 |
| 1.1.3 禾谷缢管蚜的抗药性发展概况 | 第13-14页 |
| 1.2 SC1通道基因的研究进程 | 第14-15页 |
| 1.2.1 SC1类通道的发现历程 | 第14页 |
| 1.2.2 SC1类通道的组织分布与功能 | 第14-15页 |
| 1.3 电压门控钠离子通道辅助亚基及其同源亚基的研究进展 | 第15-18页 |
| 1.3.1 哺乳动物钠离子通道的结构和功能 | 第15-16页 |
| 1.3.2 昆虫钠离子通道的结构和功能 | 第16页 |
| 1.3.3 昆虫钠离子通道辅助亚基的功能和结构 | 第16-17页 |
| 1.3.4 昆虫电压门控钠离子通道的抗性突变 | 第17-18页 |
| 1.4 本研究的目的及意义 | 第18-20页 |
| 第二章 禾谷缢管蚜阳离子通道基因RSC1克隆及特性分析 | 第20-30页 |
| 2.1 材料与方法 | 第20-24页 |
| 2.1.1 供试昆虫 | 第20页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第20页 |
| 2.1.3 RNA提取 | 第20-21页 |
| 2.1.4 cDNA第一链的合成 | 第21页 |
| 2.1.5 禾谷缢管蚜RSC1基因克隆 | 第21-22页 |
| 2.1.6 禾谷缢管蚜RSC1基因序列的分析与比较 | 第22页 |
| 2.1.7 高效氯氟氰菊酯对禾谷缢管蚜毒力测定 | 第22页 |
| 2.1.8 高效氯氟氰菊酯诱导下禾谷缢管蚜RSC1基因表达量分析 | 第22-24页 |
| 2.1.9 数据分析 | 第24页 |
| 2.2 结果与分析 | 第24-28页 |
| 2.2.1 禾谷缢管蚜RSC1基因的克隆和序列分析 | 第24-25页 |
| 2.2.2 SC1类通道与CaV和NaV通道的系统进化关系 | 第25-27页 |
| 2.2.3 高效氯氟氰菊酯对禾谷缢管蚜毒力分析 | 第27页 |
| 2.2.4 在高效氯氟氰菊酯诱导下禾谷缢管蚜RSC1基因的表达特性分析 | 第27-28页 |
| 2.3 讨论 | 第28-30页 |
| 第三章 禾谷缢管蚜钠离子通道辅助亚基基因分子特性分析 | 第30-38页 |
| 3.1 材料与方法 | 第30-31页 |
| 3.1.1 供试昆虫 | 第30页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第30页 |
| 3.1.3 RNA提取 | 第30页 |
| 3.1.4 cDNA第一链的合成 | 第30页 |
| 3.1.5 钠离子通道辅助亚基基因序列克隆 | 第30-31页 |
| 3.1.6 序列分析及比较 | 第31页 |
| 3.2 结果与分析 | 第31-36页 |
| 3.2.1 禾谷缢管蚜钠离子通道基因序列分析 | 第31-34页 |
| 3.2.2 分子系统进化分析 | 第34-36页 |
| 3.3 讨论 | 第36-38页 |
| 第四章 禾谷缢管蚜钠离子通道辅助亚基表达模式分析 | 第38-43页 |
| 4.1 材料与方法 | 第38-39页 |
| 4.1.1 供试昆虫 | 第38页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第38页 |
| 4.1.3 RNA提取 | 第38页 |
| 4.1.4 cDNA第一链的合成 | 第38页 |
| 4.1.5 生物测定 | 第38页 |
| 4.1.6 钠离子通道辅助亚基时空表达和高效氯氟氰菊酯诱导下的表达量分析 | 第38-39页 |
| 4.2 结果与分析 | 第39-41页 |
| 4.2.1 禾谷缢管蚜钠离子通道辅助亚基基因在不同发育时期的相对表达量分析 | 第39-40页 |
| 4.2.2 在高效氯氟氰菊酯诱导下禾谷缢管蚜钠离子通道辅助亚基基因的表达特性分析 | 第40-41页 |
| 4.3 讨论 | 第41-43页 |
| 第五章 总结与展望 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 作者简介 | 第58页 |
