| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 引言 | 第10-13页 |
| 1 实验材料与方法 | 第13-21页 |
| ·实验材料 | 第13-17页 |
| ·感受态细胞与质粒 | 第13页 |
| ·抗生素 | 第13页 |
| ·实验用试剂盒 | 第13页 |
| ·细胞培养相关试剂 | 第13-14页 |
| ·细胞转染相关试剂 | 第14页 |
| ·细胞药物处理 | 第14页 |
| ·常用溶液的配方 | 第14-16页 |
| ·主要抗体及荧光染料来源 | 第16页 |
| ·主要仪器设备 | 第16页 |
| ·实验动物 | 第16-17页 |
| ·实验方法 | 第17-21页 |
| ·质粒转化与提取 | 第17页 |
| ·可溶性Aβ42的制备 | 第17页 |
| ·小鼠皮质星形胶质细胞的原代培养 | 第17-18页 |
| ·小鼠星形胶质细胞转染 | 第18页 |
| ·小鼠星形胶质细胞免疫细胞化学 | 第18-19页 |
| ·ELISA检测 | 第19页 |
| ·Aβ42和药物处理 | 第19-20页 |
| ·共聚焦显微图像的获取及分析 | 第20页 |
| ·数据统计 | 第20-21页 |
| 2 实验结果 | 第21-32页 |
| ·星形胶质细胞纯化鉴定 | 第21页 |
| ·LysoTracker Red DND-99可以用于标记活细胞溶酶体 | 第21-22页 |
| ·星形胶质细胞内吞Aβ 后定位到溶酶体 | 第22-23页 |
| ·用不带荧光的Aβ42处理，观察溶酶体功能变化 | 第23-24页 |
| ·Aβ42处理后，溶酶体变酸 | 第23页 |
| ·Aβ42处理后，溶酶体体积变大、数目减少 | 第23-24页 |
| ·质子泵抑制剂Bafilomycin A1使溶酶体数目减少 | 第24-26页 |
| ·Bafilomycin A1处理使Aβ 在细胞内聚集，无法被溶酶体有效降解 | 第26页 |
| ·NH_4Cl处理加速Aβ 在细胞内的降解 | 第26-27页 |
| ·Forskolin对星形胶质细胞溶酶体功能的影响 | 第27-30页 |
| ·Forskolin使星形胶质细胞溶酶体变酸 | 第27-28页 |
| ·Forskolin处理使星形胶质细胞溶酶体体积变大、数目减少 | 第28-30页 |
| ·Forskolin处理细胞使外源性Aβ 在细胞内聚集 | 第30-31页 |
| ·Forskolin处理细胞使内源性Aβ 的产生增加 | 第31-32页 |
| 3 讨论 | 第32-36页 |
| 4 结论 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-41页 |
| 附录A 文献综述 | 第41-52页 |
| 参考文献 | 第49-52页 |
| 在学研究成果 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
