| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 目录 | 第10-12页 |
| 缩略词表 | 第12-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-22页 |
| 第一节 成瘾的概述 | 第14-17页 |
| ·成瘾的现状 | 第14页 |
| ·物质成瘾的解剖学和生化基础 | 第14-17页 |
| 第二节 PSD-95蛋白及其棕榈酰化在神经系统中的作用 | 第17-21页 |
| ·PSD-95蛋白在神经系统中的作用 | 第17-18页 |
| ·棕榈酰化在神经系统中的作用 | 第18-20页 |
| ·棕榈酰化与成瘾 | 第20-21页 |
| 第三节 本研究的基本假设和研究目的 | 第21-22页 |
| 第二章 材料与方法 | 第22-43页 |
| 第一节 慢性吗啡诱导的条件位置偏爱大鼠模型的建立 | 第22-25页 |
| ·实验动物 | 第22页 |
| ·实验药品与装置 | 第22-23页 |
| ·实验方法 | 第23-25页 |
| ·统计分析 | 第25页 |
| 第二节 检测不同时点的大鼠海马和伏隔核区PSD-95蛋白的表达 | 第25-35页 |
| ·实验试剂和耗材 | 第25-27页 |
| ·实验装置和仪器 | 第27页 |
| ·实验方法 | 第27-35页 |
| ·统计分析 | 第35页 |
| 第三节 检测不同时点大鼠海马和伏隔核区PSD-95蛋白棕榈酰化程度 | 第35-43页 |
| ·实验试剂和耗材 | 第35-36页 |
| ·实验仪器设备 | 第36-37页 |
| ·所需试剂的准备及配制 | 第37页 |
| ·免疫沉淀 | 第37-39页 |
| ·免疫沉淀的基本原理 | 第37-38页 |
| ·免疫沉淀的实验步骤 | 第38-39页 |
| ·生物素化学标记法 | 第39-42页 |
| ·生物素化学标记法的基本原理 | 第39-40页 |
| ·生物素化学标记法的实验步骤 | 第40-42页 |
| ·优化NEM反应浓度 | 第40-41页 |
| ·检测各组大鼠蛋白样本中PSD-95蛋白棕榈酰化程度 | 第41-42页 |
| ·统计分析 | 第42-43页 |
| 第三章 结果 | 第43-51页 |
| 第一节 慢性吗啡诱导的条件位置偏爱及戒断、复燃动物模型的建立 | 第43-44页 |
| ·CPP基值与CPP测试值比较 | 第43页 |
| ·各组大鼠CPP测试结果比较 | 第43-44页 |
| ·大鼠戒断症状及体重变化比较 | 第44页 |
| 第二节 检测不同时点的大鼠海马和伏隔核区PSD-95蛋白的表达 | 第44-47页 |
| ·蛋白质量检测 | 第44-45页 |
| ·各组大鼠海马及伏隔核区PSD-95蛋白的表达水平 | 第45-47页 |
| ·Western blot结果比较各组大鼠海马及伏隔核区PSD-95蛋白的表达水平 | 第45-46页 |
| ·量化分析各组大鼠海马区及伏隔核区PSD-95蛋白的Western blot结果 | 第46-47页 |
| 第三节 检测不同时点大鼠海马和伏隔核区PSD-95蛋白棕榈酰化程度 | 第47-51页 |
| ·免疫沉淀 | 第47-48页 |
| ·优化NEM反应浓度 | 第48-49页 |
| ·检测各组大鼠蛋白样本中PSD-95蛋白棕榈酰化程度 | 第49-51页 |
| ·生物素化学标记结果比较各组大鼠海马及伏隔核区PSD-95蛋白棕榈酰化的程度 | 第49页 |
| ·量化分析各组大鼠海马及伏隔核区PSD-95蛋白棕榈酰化生物素化学标记结果 | 第49-51页 |
| 第四章 讨论 | 第51-57页 |
| 第一节 慢性吗啡诱导的条件位置偏爱及戒断、复燃动物模型的建立 | 第51-52页 |
| 第二节 不同时点的大鼠海马和伏隔核区PSD-95蛋白的表达与条件性位置偏爱的关系 | 第52-54页 |
| 第三节 不同时点大鼠海马和伏隔核区PSD-95蛋白棕榈酰化程度与吗啡诱导的突触可塑性及大鼠成瘾行为的关系 | 第54-55页 |
| 第四节 本研究的创新之处和不足之处 | 第55-56页 |
| 第五节 下一步工作的建议 | 第56-57页 |
| 第五章 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-64页 |
| 综述 | 第64-75页 |
| 参考文献 | 第70-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文及参研项目 | 第76页 |
