| 中英文缩略词表 | 第1-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 1 前言 | 第13-16页 |
| 2 材料和方法 | 第16-33页 |
| ·材料 | 第16-18页 |
| ·病毒 | 第16页 |
| ·细胞 | 第16页 |
| ·试剂 | 第16-17页 |
| ·仪器和设备 | 第17-18页 |
| ·方法 | 第18-33页 |
| ·溶液的配制 | 第18-20页 |
| ·病毒增殖及病毒感染量测定 | 第20-21页 |
| ·细胞培养与病毒接种 | 第21页 |
| ·实验分组与标本收集 | 第21-22页 |
| ·A549 细胞培养上清中 OH 检测 | 第22-23页 |
| ·测定原理 | 第22页 |
| ·操作步骤 | 第22-23页 |
| ·计算公式 | 第23页 |
| ·A549 细胞上清中 NO 的检测 | 第23-24页 |
| ·测定原理 | 第23页 |
| ·操作步骤 | 第23-24页 |
| ·计算公式 | 第24页 |
| ·TLR7、IL-6、TNF-α的 mRNA 转录水平检测 | 第24-27页 |
| ·A549 细胞总 RNA 提取 | 第24页 |
| ·RNA 定性与定量分析 | 第24-25页 |
| ·两步 RT-PCR 方法检测 | 第25-26页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳检测 PCR 结果 | 第26-27页 |
| ·酶联免疫吸附实验（ELISA）检测 A549 细胞培养上清中 TNF-α和 IL-6 含量 | 第27-28页 |
| ·测定原理 | 第27页 |
| ·样本收集 | 第27页 |
| ·检测程序 | 第27-28页 |
| ·A549 细胞中 TLR7、Nrf2 和 HO-1 蛋白含量的测定 | 第28-32页 |
| ·总蛋白样本的制备 | 第28页 |
| ·Lowery 法蛋白定量 | 第28-29页 |
| ·蛋白免疫印迹（western blot）法检测 TLR7、Nrf2 和 HO-1 的蛋白表达 | 第29-32页 |
| ·四甲基偶氮唑盐（MTT）法检测细胞抑制率（%） | 第32-33页 |
| ·测定原理 | 第32页 |
| ·操作步骤 | 第32-33页 |
| ·计算公式 | 第33页 |
| ·统计学处理 | 第33页 |
| 3 结果 | 第33-50页 |
| ·病毒感染量的确定 | 第33-34页 |
| ·RSV 感染 A549 细胞不同组别 OH 的含量变化 | 第34页 |
| ·RSV 感染 A549 细胞不同组别 NO 的含量变化 | 第34-35页 |
| ·TLR7、IL-6、TNF-α在 RSV 感染组和 BHA、Trigonelline 干预组的 mRNA 转录水平变化 | 第35-41页 |
| ·TLR7 mRNA 在各组不同时间点的表达 | 第35-37页 |
| ·IL-6 mRNA 在各组不同时间点的表达 | 第37-39页 |
| ·TNF-α mRNA 在各组不同时间点的表达 | 第39-41页 |
| ·RSV感染A549细胞后各组的TNF-α和IL-6的Elisa结果 | 第41-43页 |
| ·ELISA 检测 A549 细胞培养上清中 TNF-α含量 | 第41-42页 |
| ·ELISA 检测 A549 细胞培养上清中 IL-6 含量 | 第42-43页 |
| ·RSV 感染 A549 细胞后各组 TLR7、Nrf2 和 HO-1 的 Western Blot 结果 | 第43-49页 |
| ·TLR7 在各组不同时间点的表达 | 第43-45页 |
| ·Nrf2 在各组不同时间点的表达 | 第45-47页 |
| ·HO-1 在各组不同时间点的表达 | 第47-49页 |
| ·RSV 感染 A549 细胞后各组 MTT 法检测细胞抑制情况结果 | 第49-50页 |
| 4 讨论 | 第50-53页 |
| 5 结论 | 第53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 附录 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 综述 | 第61-71页 |
| 参考文献 | 第67-71页 |
