枸杞多糖对P-糖蛋白影响的研究
| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 本文所用英文缩写词表 | 第9-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 第一章 Caco-2细胞培养及细胞毒性实验 | 第15-23页 |
| 1. 仪器与材料 | 第16-17页 |
| 2. 实验方法 | 第17-19页 |
| ·Caco-2及ECV304细胞培养 | 第17页 |
| ·细胞特性评价 | 第17-18页 |
| ·细胞毒性试验 | 第18-19页 |
| ·溶液配制 | 第18页 |
| ·MTT实验 | 第18-19页 |
| 3. 结果 | 第19-22页 |
| ·细胞形态学观察及鉴定 | 第19-21页 |
| ·MTT实验 | 第21-22页 |
| 4. 讨论 | 第22-23页 |
| 第二章 枸杞多糖对P-糖蛋白功能的影响 | 第23-35页 |
| 1. 仪器与材料 | 第23-24页 |
| 2. 实验方法 | 第24-29页 |
| ·相关试剂配制 | 第24-25页 |
| ·荧光淬灭实验 | 第25页 |
| ·时间对罗丹明-123摄取的影响 | 第25-26页 |
| ·考马斯亮蓝法(Bradford法)测定总蛋白量 | 第26-27页 |
| ·时间对药物作用的影响 | 第27-28页 |
| ·实验分组 | 第27页 |
| ·实验操作 | 第27-28页 |
| ·不同浓度药物对P-糖蛋白功能影响 | 第28-29页 |
| ·实验分组 | 第28-29页 |
| ·实验操作步骤 | 第29页 |
| ·流式细胞仪测定细胞内荧光强度 | 第29页 |
| 3. 结果 | 第29-34页 |
| ·荧光淬灭实验 | 第29-30页 |
| ·时间对罗丹明-123摄取的影响 | 第30-31页 |
| ·时间对药物作用的影响 | 第31-32页 |
| ·不同浓度药物对P-糖蛋白功能影响 | 第32-34页 |
| 4. 讨论 | 第34-35页 |
| 第三章 枸杞多糖对P-糖蛋白表达的影响 | 第35-41页 |
| 1. 仪器与材料 | 第35页 |
| 2. 实验方法 | 第35-37页 |
| ·溶液配制 | 第35-36页 |
| ·实验分组 | 第36页 |
| ·实验操作 | 第36-37页 |
| ·流式细胞仪测定细胞内荧光强度 | 第37页 |
| ·数据处理 | 第37页 |
| 3. 结果 | 第37-39页 |
| 4. 讨论 | 第39-41页 |
| 第四章 枸杞多糖对罗丹明-123转运的影响 | 第41-50页 |
| 1. 材料与仪器 | 第41-42页 |
| 2. 实验方法 | 第42-44页 |
| ·溶液配制 | 第42页 |
| ·Caco-2细胞单层模型建立及验证 | 第42-43页 |
| ·细胞单层紧密性与完整性验证 | 第42-43页 |
| ·细胞单层通透性验证 | 第43页 |
| ·罗丹明-123跨膜转运试验 | 第43-44页 |
| ·实验分组 | 第43-44页 |
| ·实验操作 | 第44页 |
| ·转运液中罗丹明-123的测定 | 第44页 |
| 3. 数据处理 | 第44页 |
| 4. 结果 | 第44-49页 |
| ·Caco-2细胞单层模型的评价 | 第44-46页 |
| ·细胞单层紧密性与完整性验证 | 第44-45页 |
| ·实验前后TEER值的改变情况 | 第45-46页 |
| ·细胞单层通透性验证 | 第46页 |
| ·转运液中罗丹明-123浓度的测定 | 第46-47页 |
| ·专属性 | 第46页 |
| ·标准曲线 | 第46-47页 |
| ·精密度 | 第47页 |
| ·稳定性 | 第47页 |
| ·样品中罗丹明-123的测定 | 第47-49页 |
| 5. 讨论 | 第49-50页 |
| 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-56页 |
| 综述 | 第56-62页 |
| 参考文献 | 第59-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第63页 |
