| 英文缩略语表 | 第1-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 前言 | 第9-11页 |
| 第一章 实验材料与试剂 | 第11-18页 |
| ·材料 | 第11页 |
| ·常用试剂 | 第11-12页 |
| ·试剂配置 | 第12-17页 |
| ·主要仪器 | 第17-18页 |
| 第二章 实验方法 | 第18-26页 |
| ·六个胃癌细胞系中 HKⅡ表达水平鉴定 | 第18-20页 |
| ·六个胃癌细胞系总 RNA 提取 | 第18页 |
| ·RT-PCR 检测六个胃癌细胞系 HKⅡmRNA 的表达水平 | 第18-19页 |
| ·Real-Time PCR 检测六个胃癌细胞系 HKⅡmRNA 的表达水平 | 第19页 |
| ·Western Bloting 检测六个胃癌细胞系 HKⅡ蛋白水平的变化 | 第19-20页 |
| ·缺氧细胞模型的建立 | 第20-21页 |
| ·二氯化钴加药浓度的确定 | 第20-21页 |
| ·MTT 法测定二氯化钴的 IC5020 | 第20页 |
| ·MTT 法判断二氯化钴的加药浓度 | 第20-21页 |
| ·二氯化钴处理时间的确定 | 第21页 |
| ·二氧化钴处理后对细胞生物学行为的影响 | 第21-22页 |
| ·MTT 法观察二氧化钴处理后细胞生长情况 | 第21-22页 |
| ·划痕愈合实验检测缺氧细胞迁移能力 | 第22页 |
| ·流式细胞术分析二氧化钴处理后对细胞凋亡的的影响 | 第22页 |
| ·胃癌细胞低氧适应机制的研究 | 第22-25页 |
| ·乳酸含量的测定 | 第22页 |
| ·ROS 含量的测定 | 第22-23页 |
| ·免疫荧光检测缺氧细胞内缺氧蛋白水平的变化 | 第23页 |
| ·Western Blotting 检测缺氧细胞内 HKⅡ和 HIF-1α蛋白水平的变化 | 第23-24页 |
| ·RT-PCR 检测缺氧细胞内 HKⅡ和 HIF-1αmRNA 水平的变化 | 第24-25页 |
| ·缺氧对肿瘤化疗的影响 | 第25-26页 |
| 第三章 实验结果 | 第26-33页 |
| ·胃癌基因表达谱 | 第26页 |
| ·检测胃癌细胞系中 HKⅡ表达水平 | 第26-27页 |
| ·缺氧细胞模型的建立 | 第27-28页 |
| ·二氯化钴处理后对 SGC7901 细胞生物学行为的影响 | 第28-30页 |
| ·MTT 法对细胞的生长情况进行分析 | 第28-29页 |
| ·应用划痕愈合实验分析 SGC7901 细胞的迁移能力 | 第29页 |
| ·流式细胞术分析缺氧对细胞的凋亡的影响 | 第29-30页 |
| ·胃癌细胞对缺氧适应机制的研究 | 第30-32页 |
| ·乳酸含量的测定 | 第30-31页 |
| ·ROS 含量的测定 | 第31页 |
| ·免疫荧光检测缺氧细胞内 HKⅡ和 HIF-1α蛋白水平的变化 | 第31-32页 |
| ·检测缺氧细胞 HKⅡ和 HIF-1α表达水平的变化 | 第32页 |
| ·缺氧对肿瘤化疗的影响 | 第32-33页 |
| 第四章 讨论 | 第33-38页 |
| 第五章 小结 | 第38页 |
| 参考文献 | 第38-42页 |
| 文献综述 | 第42-50页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第51-52页 |
