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大豆组织培养体系优化与双价抗虫基因遗传转化的研究

中文摘要第1-5页
英文摘要第5-7页
目录第7-10页
1 前言第10-29页
 1.1 研究的目的和意义第10页
 1.2 文献综述第10-28页
  1.2.1 大豆的组织培养与植株再生第10-19页
   1.2.1.1 大豆原生质体和单细胞的组织培养与植株再生第10-12页
   1.2.1.2 大豆器官发生与植株再生第12-15页
   1.2.1.3 大豆体细胞胚胎发生与植株再生第15-19页
  1.2.2 大豆的遗传转化第19-28页
   1.2.2.1 大豆的遗传转化方法第19-26页
   1.2.2.2 大豆遗传转化的外源基因第26-28页
 1.3 大豆组织培养与遗传转化的主要障碍及可能的解决途径第28-29页
2 材料与方法第29-44页
 2.1 大豆的组织培养与植株再生第29-32页
  2.1.1 大豆真叶、子叶节和下胚轴体细胞胚胎发生的诱导第29-30页
  2.1.2 大豆子叶节丛生芽的诱导与植株再生第30页
  2.1.3 大豆未成熟子叶体细胞胚胎发生的诱导第30-32页
   2.1.3.1 不同大豆基因型诱导未成熟子叶体细胞胚胎发生第30-31页
   2.1.3.2 不同培养基诱导大豆品种未成熟子叶体细胞胚胎发生第31页
   2.1.3.3 不同低温预处理时间诱导大豆未成熟子叶体细胞胚胎发生第31页
   2.1.3.4 不同生长素种类和浓度诱导大豆未成熟子叶体细胞胚胎发生第31-32页
   2.1.3.5 影响大豆品种未成熟子叶体细胞胚胎发生因子的试验第32页
  2.1.4 大豆体细胞胚性组织的诱导、增殖与再生植株第32页
   2.1.4.1 大豆体细胞胚性组织的诱导第32页
   2.1.4.2 大豆体细胞胚性组织的增殖第32页
   2.1.4.3 大豆体细胞胚性组织的萌发与再生植株第32页
 2.2 根癌农杆菌介导的大豆遗传转化第32-37页
  2.2.1 根癌农杆菌菌株与质粒第32-35页
   2.2.1.1 质粒图谱第33页
   2.2.1.2 农杆菌菌株与细菌转化第33-34页
   2.2.1.3 质粒酶切检测第34-35页
  2.2.2 脱菌剂的筛选第35页
   2.2.2.1 脱菌抗生素种类与浓度的筛选第35页
   2.2.2.2 大豆品种下胚轴和子叶节头孢霉素浓度的确定第35页
   2.2.2.3 大豆未成熟子叶头孢霉素浓度的确定第35页
  2.2.3 根癌农杆菌介导的大豆遗传转化第35-37页
   2.2.3.1 菌液的制备第36页
   2.2.3.2 大豆品种与根癌农杆菌间相互作用试验第36页
   2.2.3.3 根癌农杆菌介导大豆品种未成熟子叶的遗传转化第36-37页
   2.2.3.4 根癌农杆菌介导大豆胚性组织的遗传转化第37页
   2.2.3.5 影响根癌农杆菌介导大豆未成熟子叶遗传转化的因子第37页
 2.3 基因枪轰击大豆遗传转化第37-39页
  2.3.1 基因枪轰击大豆的转化方法第37-38页
   2.3.1.1 受体材料的预处理第37页
   2.3.1.2 微弹载体制备、装弹与轰击第37-38页
  2.3.2 基因枪轰击大豆的胚性组织第38页
  2.3.3 影响基因枪轰击大豆遗传转化因子的试验第38-39页
 2.4 转化体的筛选与鉴定第39-44页
  2.4.1 抗性选择标记(卡那霉素)适宜浓度的确定第39页
   2.4.1.1 大豆下胚轴、真叶和子叶节卡那霉素浓度的确定第39页
   2.4.1.2 大豆未成熟子叶卡那霉素浓度的确定第39页
  2.4.2 GUS基因的检测第39页
  2.4.3 PCR检测第39-41页
   2.4.3.1 大豆组织DNA的提取第39-40页
   2.4.3.2 PCR引物第40页
   2.4.3.3 PCR反应体系第40-41页
   2.4.3.4 PCR反应程序第41页
   2.4.3.5 PCR产物检测第41页
  2.4.4 PCR-Southern杂交(地高辛法)第41-44页
   2.4.4.1 大豆组织DNA的提取第41页
   2.4.4.2 PCR扩增第41页
   2.4.4.3 质粒DNA快速纯化与回收第41-42页
   2.4.4.4 探针标记第42页
   2.4.4.5 印迹及变性处理(电转移法)第42-43页
   2.4.4.6 预杂交与杂交第43页
   2.4.4.7 洗膜、染色与检测第43-44页
3 结果与分析第44-77页
 3.1 大豆组织培养体系的优化第44-59页
  3.1.1 大豆真叶、子叶节和下胚轴体细胞胚胎发生的诱导第44-46页
  3.1.2 大豆子叶节丛生芽的诱导与植株再生第46-48页
  3.1.3 大豆未成熟子叶体细胞胚胎发生的诱导第48-59页
   3.1.3.1 基因型对大豆未成熟子叶体细胞胚胎发生的影响第48-49页
   3.1.3.2 培养基对大豆品种未成熟子叶体细胞胚胎发生的影响第49-52页
   3.1.3.3 低温预处理对大豆品种未成熟子叶体细胞胚胎发生的影响第52-54页
   3.1.3.4 生长素对大豆品种未成熟子叶体细胞胚胎发生的影响第54-56页
   3.1.3.5 影响大豆品种未成熟子叶体细胞胚胎发生的其它因子第56-59页
 3.2 大豆体细胞胚性组织的诱导、增殖与再生植株体系的建立第59-63页
  3.2.1 大豆体细胞胚性组织的诱导第59-60页
  3.2.2 大豆体细胞胚性组织的增殖第60-61页
  3.2.3 大豆体细胞胚性组织的萌发与再生植株第61-63页
 3.3 抗生素敏感性试验结果第63-69页
  3.3.1 脱菌抗生素种类与浓度的确定第63-65页
  3.3.2 大豆不同外植体对抗性选择标记卡那霉素的敏感性第65-67页
   3.3.2.1 大豆子叶节、下胚轴和真叶对卡那霉素的敏感性第65-66页
   3.3.2.2 大豆未成熟子叶对卡那霉素的敏感性第66-67页
  3.3.3 大豆不同外植体对头孢霉素的敏感性第67-69页
   3.3.3.1 大豆下胚轴和子叶节对头孢霉素的敏感性第67-68页
   3.3.3.2 大豆未成熟子叶对头孢霉素的敏感性第68-69页
 3.4 根癌农杆菌介导的大豆遗传转化第69-75页
  3.4.1 细菌转化与质粒检测第69-70页
  3.4.2 大豆基因型对根癌农杆菌菌株的敏感性第70-71页
  3.4.3 根癌农杆菌介导不同大豆品种未成熟子叶和胚性组织的遗传转化第71-73页
  3.4.4 影响根癌农杆菌介导大豆未成熟子叶遗传转化的主要因子第73-75页
 3.5 基因枪轰击的大豆遗传转化第75-77页
  3.5.1 基因枪轰击大豆胚性组织GUS基因的瞬时表达第75页
  3.5.2 影响大豆基因枪转化的主要因子第75-77页
4 讨论第77-83页
 4.1 东北地区主栽大豆品种未成熟子叶体细胞胚胎发生与再生植株体系的建立第77页
 4.2 两种生长素诱导大豆体细胞胚胎发生效率的比较第77-78页
 4.3 低温预处理可提高大豆体细胞胚胎发生率第78页
 4.4 可增殖的大豆胚性组织培养体系的建立第78-79页
 4.5 抗生素对大豆外植体生长的抑制及对遗传转化的影响第79-80页
 4.6 根癌农杆菌介导大豆未成熟子叶与胚性组织的遗传转化第80-81页
 4.7 基因枪轰击大豆未成熟子叶与胚性组织的遗传转化第81页
 4.8 Bt和CpTI双价抗虫基因对大豆的遗传转化效果第81-83页
5 结论第83-85页
参考文献第85-99页
附录第99-100页
图版第100-104页
图版说明第104-106页
致谢第106-107页
在读期间获奖及发表论文第107-109页

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