| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-19页 |
| 引言 | 第19-21页 |
| 第一章 文献研究 | 第21-55页 |
| 一、芦荟研究进展 | 第21-32页 |
| 1 芦荟的种类 | 第21-22页 |
| 2 芦荟的历史 | 第22-23页 |
| 3 芦荟的主要化学成分 | 第23-25页 |
| 4 芦荟的主要功效 | 第25-32页 |
| 二、芦荟多糖药理作用研究现状 | 第32-40页 |
| 1 免疫调节作用 | 第32页 |
| 2 抗肿瘤作用 | 第32-33页 |
| 3 抗辐射作用 | 第33页 |
| 4 保肝作用 | 第33-34页 |
| 5 创伤愈合作用 | 第34页 |
| 6 抗炎、抗艾滋病病毒作用 | 第34页 |
| 7 降血糖作用 | 第34-35页 |
| 8 其他作用 | 第35页 |
| 9 结语 | 第35-40页 |
| 三、原发性肝癌的病因和发病机制研究 | 第40-46页 |
| 1 肝炎病毒 | 第40-41页 |
| 2 肝硬化 | 第41页 |
| 3 黄曲霉素 | 第41页 |
| 4 饮水污染 | 第41页 |
| 5 肝吸虫 | 第41-42页 |
| 6 幽门螺杆菌 | 第42页 |
| 7 饮酒和吸烟 | 第42页 |
| 8 遗传因素 | 第42-43页 |
| 9 糖尿病 | 第43页 |
| 10 结论 | 第43-46页 |
| 四、中医药治疗原发性肝癌研究进展 | 第46-55页 |
| 1 辨证论治研究 | 第46页 |
| 2 中医治法研究 | 第46-47页 |
| 3 中药外治研究 | 第47-48页 |
| 4 单味药及有效成分研究 | 第48页 |
| 5 中药复方研究 | 第48-49页 |
| 6 中西医结合治疗研究 | 第49-50页 |
| 7 讨论 | 第50-55页 |
| 第二章 实验研究 | 第55-89页 |
| 第一部分 芦荟多糖的提取纯化及含量测定 | 第55-61页 |
| 材料与方法 | 第55-58页 |
| 1 材料 | 第55-56页 |
| ·药物 | 第55页 |
| ·试剂 | 第55-56页 |
| ·仪器 | 第56页 |
| 2 方法 | 第56-58页 |
| ·芦荟凝胶冻干粉中总糖的测定 | 第56-57页 |
| ·葡萄糖标准溶液的配制 | 第56页 |
| ·蒽酮试剂的配制 | 第56页 |
| ·标准曲线的测定 | 第56页 |
| ·总糖的含量测定 | 第56-57页 |
| ·芦荟凝胶冻干粉中多糖的分离、纯化及含量测定 | 第57页 |
| ·芦荟粗多糖的分离 | 第57页 |
| ·芦荟粗多糖的纯化 | 第57页 |
| ·芦荟多糖含量测定 | 第57页 |
| ·蛋白质含量测定 | 第57-58页 |
| ·考马斯亮蓝G-250蛋白试剂的配制 | 第57页 |
| ·蛋白质标准溶液的配制 | 第57-58页 |
| ·标准曲线的测定 | 第58页 |
| ·蛋白质含量的测定 | 第58页 |
| ·统计方法 | 第58页 |
| 结果 | 第58-59页 |
| 讨论 | 第59-61页 |
| 第二部分 芦荟多糖对外周血单个核细胞和HepG2生长的影响 | 第61-69页 |
| 材料与方法 | 第61-64页 |
| 1 材料 | 第61-62页 |
| ·药物 | 第61页 |
| ·试剂 | 第61-62页 |
| ·仪器 | 第62页 |
| ·其它 | 第62页 |
| 2 方法 | 第62-64页 |
| ·PBMC的原代培养 | 第62-63页 |
| ·PBMC的分离制备 | 第62页 |
| ·PBMC生长曲线测定 | 第62页 |
| ·PBMC活力检测 | 第62-63页 |
| ·芦荟多糖对PBMC生长的影响 | 第63页 |
| ·芦荟多糖对HepG2生长的影响 | 第63-64页 |
| ·HepG2细胞的解冻和培养 | 第63页 |
| ·HepG2细胞的冷冻保存 | 第63页 |
| ·HepG2细胞的传代 | 第63-64页 |
| ·MTT法测定HepG2细胞的生长趋势 | 第64页 |
| ·MTT法测定芦荟多糖对HepG2生长的影响 | 第64页 |
| ·统计方法 | 第64页 |
| 结果 | 第64-67页 |
| 1 PBMC原代培养 | 第64页 |
| 2 PBMC生长趋势 | 第64页 |
| 3 HepG2生长趋势 | 第64-65页 |
| 4 芦荟多糖对PBMC生长的影响 | 第65-66页 |
| 5 芦荟多糖对HepG2生长的影响 | 第66-67页 |
| 讨论 | 第67-69页 |
| 第三部分 芦荟多糖抗肿瘤作用机制研究 | 第69-83页 |
| 材料与方法 | 第70-73页 |
| 1 材料 | 第70-71页 |
| ·药物 | 第70页 |
| ·试剂 | 第70页 |
| ·仪器 | 第70-71页 |
| ·其它 | 第71页 |
| 2 方法 | 第71-73页 |
| ·AP11单独及联合Anti-CD3McAb、rhIL-2干预的PBMC对HepG2生长的影响 | 第71-72页 |
| ·效应细胞PBMC的诱导制备及分组 | 第71页 |
| ·倒置显微镜下观察各组PBMC形态特点 | 第71页 |
| ·AP及其联合Anti-CD3McAb与rhIL-2对PBMC生长的影响 | 第71页 |
| ·MTT法观察效应细胞上清液对靶细胞生长的影响 | 第71-72页 |
| ·MTT法观察效应细胞对靶细胞生长及其形态的影响 | 第72页 |
| ·AP抗肿瘤作用机制研究 | 第72-73页 |
| ·效应细胞对靶细胞周期及凋亡率的影响 | 第72页 |
| ·TNF-α、IFN-γ和AKP的测定 | 第72-73页 |
| ·芦荟多糖AP11单独或联合Anti-CDMcAb、rIL-2对PBMC FasL表达的影响 | 第73页 |
| ·效应细胞对靶细胞HepG2 Fas表达的影响 | 第73页 |
| ·统计方法 | 第73页 |
| 结果 | 第73-77页 |
| 1 PBMC在光镜下的形态特点 | 第73-74页 |
| 2 AP11及其联合Anti-CD3McAb与rhIL-2对PBMC生长的影响 | 第74页 |
| 3 MTT法观察效应细胞上清液对靶细胞生长的影响 | 第74页 |
| 4 MTT法观察效应细胞对靶细胞生长及其形态的影响 | 第74-75页 |
| 5 效应细胞对靶细胞周期及凋亡率的影响 | 第75-76页 |
| 6 TNF-α、IFN-γ和AKP的测定 | 第76-77页 |
| ·芦荟多糖对PBMC上清中IFN-γ水平的影响 | 第76页 |
| ·芦荟多糖对PBMC上清中TNF-α水平的影响 | 第76页 |
| ·效应细胞对靶细胞HepG2上清中IFN-γ水平的影响 | 第76-77页 |
| ·效应细胞对靶细胞HepG2上清中TNF-α水平的影响 | 第77页 |
| ·效应细胞对靶细胞HepG2上清中AKP水平的影响 | 第77页 |
| 7 Fas/FasL的测定 | 第77页 |
| ·芦荟多糖对PBMC FasL表达的影响 | 第77页 |
| ·效应细胞对HepG2 Fas表达的影响 | 第77页 |
| 讨论 | 第77-83页 |
| 1 芦荟多糖对PBMC生长的影响 | 第77-78页 |
| 2 芦荟多糖干预的PBMC效应细胞及其上清液对HepG2生长的影响 | 第78页 |
| 3 芦荟多糖干预的PBMC效应细胞对HepG2靶细胞周期及凋亡率的影响 | 第78-79页 |
| 4 芦荟多糖对PBMC分泌IFN-γ的影响 | 第79页 |
| 5 芦荟多糖对细胞因子TNF-α的影响 | 第79-80页 |
| 6 芦荟多糖干预的效应细胞对靶细胞HepG2 AKP水平的影响 | 第80页 |
| 7 芦荟多糖对效应细胞FasL与靶细胞Fas蛋白表达的影响 | 第80-83页 |
| 第四部分 PHCC原代培养及AP11、自体PBMC对其影响的探讨 | 第83-89页 |
| 材料与方法 | 第84-86页 |
| 1 材料 | 第84页 |
| ·药物 | 第84页 |
| ·试剂 | 第84页 |
| ·仪器 | 第84页 |
| ·其它 | 第84页 |
| 2 方法 | 第84-86页 |
| ·人PBMC分离制备 | 第84页 |
| ·原发性肝细胞癌癌细胞的制备 | 第84-85页 |
| ·取材 | 第85页 |
| ·初步处理 | 第85页 |
| ·原代肝癌细胞分离及分组培养 | 第85页 |
| ·芦荟多糖对原代培养肝癌细胞形态的影响 | 第85页 |
| ·同源外周血单个核细胞(PBMC)对肝癌细胞生长的影响 | 第85页 |
| ·统计方法 | 第85-86页 |
| 结果 | 第86-87页 |
| 1 肝癌细胞的原代培养 | 第86页 |
| 2 原代肝癌细胞形态学研究 | 第86页 |
| 3 芦荟多糖对原代培养肝癌细胞形态的影响 | 第86页 |
| 4 芦荟多糖对原代培养肝癌细胞生长的影响 | 第86-87页 |
| 讨论 | 第87-89页 |
| 第三章 结语 | 第89-91页 |
| 一、结论 | 第89页 |
| 二、本课题的创新点 | 第89-90页 |
| 三、存在的问题 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-93页 |
| 附录 | 第93-105页 |
| 在校期间发表论文 | 第105-106页 |
| 致谢 | 第106页 |
