| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-59页 |
| §1.1 引言 | 第13-15页 |
| §1.2 芯片和毛细管电泳单细胞组分测定 | 第15-33页 |
| §1.2.1 细胞进样 | 第15-22页 |
| §1.2.1.1 单细胞溶解进样 | 第15-16页 |
| §1.2.1.2 细胞质进样 | 第16-17页 |
| §1.2.1.3 单个全细胞进样 | 第17-22页 |
| §1.2.2 细胞定位 | 第22-24页 |
| §1.2.3 细胞溶膜 | 第24-28页 |
| §1.2.4 细胞衍生 | 第28-32页 |
| §1.2.4.1 柱前衍生 | 第28-30页 |
| §1.2.4.2 柱上衍生 | 第30-32页 |
| §1.2.4.3 柱后衍生 | 第32页 |
| §1.2.5 检测技术 | 第32-33页 |
| §1.3 脂质体研究 | 第33-47页 |
| §1.3.1 脂质体制备 | 第35-40页 |
| §1.3.2 脂质体和细胞作用 | 第40-42页 |
| §1.3.3 脂质体在化学领域的应用 | 第42-47页 |
| §1.4 参考文献 | 第47-59页 |
| 第二章 微流控芯片上单个人血红细胞内ROS的测定 | 第59-68页 |
| §2.1 引言 | 第59页 |
| §2.2 实验部分 | 第59-61页 |
| §2.2.1 仪器 | 第59-60页 |
| §2.2.2 试剂 | 第60页 |
| §2.2.3 细胞样品处理 | 第60-61页 |
| §2.2.4 分析步骤 | 第61页 |
| §2.2.4.1 标准溶液测定 | 第61页 |
| §2.2.4.2 单细胞中ROS的测定 | 第61页 |
| §2.3 结果与讨论 | 第61-66页 |
| §2.3.1 细胞样品处理 | 第61-62页 |
| §2.3.2 电泳缓冲溶液 | 第62-64页 |
| §2.3.3 定量方法 | 第64-65页 |
| §2.3.4 单细胞中ROS的测定 | 第65-66页 |
| §2.4 结论 | 第66页 |
| §2.5 参考文献 | 第66-68页 |
| 第三章 用于单个肿瘤细胞分析的新型多深度微流控芯片 | 第68-78页 |
| §3.1 引言 | 第68-69页 |
| §3.2 实验部分 | 第69-71页 |
| §3.2.1 仪器装置 | 第69页 |
| §3.2.2 多深度微流控芯片的制作 | 第69-70页 |
| §3.2.3 试剂 | 第70-71页 |
| §3.2.4 细胞内ROS和GSH的标记 | 第71页 |
| §3.2.5 用多深度微流控芯片检测单细胞 | 第71页 |
| §3.3 结果与讨论 | 第71-75页 |
| §3.3.1 芯片的设计与制作 | 第71-73页 |
| §3.3.2 细胞的进样和溶膜 | 第73-74页 |
| §3.3.3 用多深度微流控芯片分析肝癌细胞内的ROS和GSH | 第74-75页 |
| §3.4 结论 | 第75页 |
| §3.5 参考文献 | 第75-78页 |
| 第四章 纳米脂质体包裹荧光试剂进入单细胞的研究 | 第78-95页 |
| §4.1 引言 | 第78-79页 |
| §4.2 实验部分 | 第79-82页 |
| §4.2.1 试剂 | 第79页 |
| §4.2.2 仪器 | 第79-80页 |
| §4.2.3 脂质体制备 | 第80页 |
| §4.2.4 细胞培养 | 第80页 |
| §4.2.5 脂质体进入细胞的条件测定 | 第80-81页 |
| §4.2.6 脂质体作用细胞后细胞活性的测定 | 第81页 |
| §4.2.7 标准溶液的芯片电泳 | 第81页 |
| §4.2.8 细胞样品处理 | 第81-82页 |
| §4.2.9 单细胞微流控芯片检测 | 第82页 |
| §4.3 结果与讨论 | 第82-92页 |
| §4.3.1 脂质体的制备和性质 | 第82-84页 |
| §4.3.1.1 脂质体制备的影响因素 | 第82-83页 |
| §4.3.1.2 脂质体的稳定性 | 第83页 |
| §4.3.1.3 脂质体的包封率和密度 | 第83-84页 |
| §4.3.2 脂质体介导荧光试剂进入细胞 | 第84-86页 |
| §4.3.3 脂质体介导荧光试剂进入细胞的影响因素 | 第86-89页 |
| §4.3.3.1 培养时间的影响 | 第86-87页 |
| §4.3.3.2 脂质体浓度的影响 | 第87-88页 |
| §4.3.3.3 FITC浓度的影响 | 第88页 |
| §4.3.3.4 Ca~(2+)的影响 | 第88-89页 |
| §4.3.4 脂质体对细胞活性的影响 | 第89页 |
| §4.3.5 芯片毛细管电泳激光诱导荧光检测FITC进入细胞后的衍生效果 | 第89-92页 |
| §4.4 结论 | 第92页 |
| §4.5 参考文献 | 第92-95页 |
| 第五章 SOD脂质体清除肝癌细胞内活性氧能力在微流控芯片上的测定 | 第95-106页 |
| §5.1 引言 | 第95-96页 |
| §5.2 实验部分 | 第96-98页 |
| §5.2.1 仪器装置 | 第96-97页 |
| §5.2.2 试剂 | 第97页 |
| §5.2.3 SOD的FITC染色 | 第97页 |
| §5.2.4 脂质体制备 | 第97页 |
| §5.2.5 脂质体投递SOD进入细胞 | 第97页 |
| §5.2.6 细胞内ROS和GSH衍生 | 第97-98页 |
| §5.2.7 微流控芯片检测单细胞 | 第98页 |
| §5.3 结果与讨论 | 第98-103页 |
| §5.3.1 共聚焦荧光显微镜验证脂质体介导SOD-FITC进入细胞 | 第98-99页 |
| §5.3.2 用芯片毛细管电泳测定脂质体密度对SOD—FITC进入细胞量的影响 | 第99-100页 |
| §5.3.3 用芯片毛细管电泳测定HepG2肝癌细胞内活性氧 | 第100-101页 |
| §5.3.4 用芯片毛细管电泳测定脂质体介导SOD清除细胞内活性氧能力 | 第101页 |
| §5.3.5 流式细胞仪方法测定脂质体介导SOD清除细胞内自由基能力 | 第101-103页 |
| §5.4 结论 | 第103页 |
| §5.5 参考文献 | 第103-106页 |
| 附录 | 第106-107页 |
| 致谢 | 第107-108页 |
| 独创性声明 | 第108页 |
| 学位论文版权使用授权书 | 第108页 |
