| 摘要 | 第1-12页 |
| 英文摘要 | 第12-14页 |
| 1 前言 | 第14-32页 |
| ·马流行性感冒研究进展 | 第14-22页 |
| ·马流行性感冒概述 | 第14页 |
| ·马流行性感冒病毒 | 第14页 |
| ·流行病学 | 第14-17页 |
| ·临床症状 | 第17-18页 |
| ·病理变化 | 第18页 |
| ·发病机制 | 第18-19页 |
| ·诊断 | 第19-20页 |
| ·马流感暴发后的管理 | 第20-21页 |
| ·疫苗及免疫 | 第21-22页 |
| ·预防新措施 | 第22页 |
| ·马流感病毒研究进展 | 第22-26页 |
| ·EIV概况 | 第23页 |
| ·病毒特征 | 第23-25页 |
| ·EIV的复制 | 第25-26页 |
| ·EIV变异 | 第26页 |
| ·EIV与其他流感病毒的关系 | 第26页 |
| ·A型流感病毒的种间传播 | 第26-30页 |
| ·概述 | 第27页 |
| ·A型流感病毒的受体及受体识别 | 第27-28页 |
| ·A型流感病毒的种间传播 | 第28-29页 |
| ·小结 | 第29-30页 |
| ·结语 | 第30-32页 |
| 2 材料和方法 | 第32-39页 |
| ·材料 | 第32页 |
| ·毒株 | 第32页 |
| ·10日龄SPF鸡胚和SPF鸡抗凝血 | 第32页 |
| ·健康小鼠、大鼠、豚鼠和兔 | 第32页 |
| ·分子生物学试剂 | 第32页 |
| ·引物 | 第32页 |
| ·质粒与菌株 | 第32页 |
| ·主要仪器 | 第32页 |
| ·方法 | 第32-39页 |
| ·0.5％鸡红细胞悬液的制备 | 第32-33页 |
| ·毒株传代及血凝价测定 | 第33页 |
| ·电镜观察 | 第33页 |
| ·血凝活性的温度敏感性试验 | 第33页 |
| ·动物感染试验 | 第33-34页 |
| ·血凝抑制试验(HI) | 第34-35页 |
| ·病毒的浓缩与纯化 | 第35页 |
| ·RNA提取 | 第35-36页 |
| ·RT-PCR | 第36页 |
| ·重组质粒pGEM-T-X的构建 | 第36-37页 |
| ·重组质粒pGEM-T-X的鉴定 | 第37页 |
| ·序列的测定 | 第37页 |
| ·序列的比较分析 | 第37页 |
| ·真核表达质粒pcDNA-HA的构建 | 第37-39页 |
| 3 结果 | 第39-67页 |
| ·血凝价的测定 | 第39页 |
| ·病毒形态观察 | 第39页 |
| ·血凝活性的温度敏感性试验 | 第39-41页 |
| ·动物感染试验 | 第41-43页 |
| ·小鼠感染试验 | 第41页 |
| ·大鼠感染试验 | 第41页 |
| ·豚鼠感染试验 | 第41-43页 |
| ·兔感染试验 | 第43页 |
| ·我国EIV血凝素基因进化树的构建 | 第43-47页 |
| ·EIV不同毒株HA基因的克隆与鉴定 | 第43-44页 |
| ·我国EIV与其他国家的EIV血凝素基因的序列比较 | 第44-47页 |
| ·我国EIV的HA基因编码氨基酸序列比较 | 第47页 |
| ·EIV青海株(A/Equine/Qinghai/1/94)基因组分析 | 第47-67页 |
| ·EIV青海株HA基因 | 第47-49页 |
| ·EIV青海株NA基因 | 第49-52页 |
| ·EIV青海株NP基因 | 第52-54页 |
| ·EIV青海株M基因 | 第54-57页 |
| ·EIV青海株NS基因 | 第57-59页 |
| ·A/Equine/Qinghai/1/94毒株PA基因 | 第59-60页 |
| ·EIV青海株PB1基因 | 第60-62页 |
| ·EIV青海株PB2基因 | 第62-64页 |
| ·真核表达质粒的构建 | 第64-67页 |
| 4 讨论 | 第67-72页 |
| ·马流感病毒特性研究及诊断方法的建立 | 第67-68页 |
| ·我国EIV HA基因进化树构建 | 第68-69页 |
| ·EIV青海株基因组分析 | 第69-70页 |
| ·含EIV青海株HA基因真核表达质粒的构建 | 第70-72页 |
| 5 结论 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-81页 |
| 附录 | 第81-110页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第110-111页 |
| 致谢 | 第111-112页 |
| 本人简历 | 第112页 |
| CURRICULUM VITAE | 第112-114页 |
