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小麦矮秆基因同源序列的克隆与BAC源合池的构建

中文摘要第1-10页
英文摘要第10-12页
第一章 文献综述第12-36页
 1 赤霉酸代谢与赤霉酸反应突变体第12-25页
  1.1 赤霉酸的生物合成与分解代谢第12-14页
  1.2 赤霉酸的生理作用第14-17页
   1.2.1 营养组织中细胞的生长第14-15页
   1.2.2 花和果实的发育第15-16页
   1.2.3 通过糊粉层细胞活化种子贮藏物第16-17页
   1.2.4 关于赤霉酸的细胞反应第17页
  1.3 赤霉酸代谢的调控第17-20页
   1.3.1 反馈调控第18-19页
   1.3.2 光调控第19-20页
   1.3.3 温度调控第20页
  1.4 赤霉酸反应突变体第20-25页
   1.4.1 矮秆或半矮秆赤霉酸反应不敏感突变体第21-23页
   1.4.2 组成型赤霉酸反应突变体第23-25页
 2 太谷核不育小麦的研究进展第25-26页
  2.1 太谷核不育小麦的发现及其遗传特点第25页
  2.2 太谷核不育小麦的生理生化特性第25-26页
  2.3 太谷核不育小麦的研究意义第26页
 3 矮败小麦的研究进展第26-28页
  3.1 矮秆基因Rht10的起源及其遗传特性第26-27页
  3.2 矮败小麦的起源及其优点第27页
  3.3 矮败小麦的遗传特性第27-28页
 4 植物体图位克隆基因的策略第28-34页
  4.1 图位克隆概况第28-29页
  4.2 分子标记技术的发展第29-30页
  4.3 大片段基因组文库的构建第30-33页
   4.3.1 λ噬菌体文库第30-31页
   4.3.2 Cosmid(柯斯质粒)文库第31页
   4.3.3 YAC(酵母人工染色体)文库第31-32页
   4.3.4 BAC(细菌人工染色体)文库第32-33页
  4.4 目标基因的获得与鉴定第33-34页
 5 立题意义及技术路线第34-36页
  5.1 立题意义第34-35页
  5.2 技术路线第35-36页
第二章 矮败中国春小麦矮秆基因同源序列的克隆及多态性位点的检测第36-58页
 1 材料与方法第36-46页
  1.1 材料第36-37页
  1.2 总RNA的提取与检测第37-38页
  1.3 cDNA第一条链合成第38页
  1.4 RT-PCR第38-40页
  1.5 PCR产物回收纯化第40页
  1.6 PCR产物与载体连接第40页
  1.7 PCR连接产物的转化第40-41页
  1.8 菌液PCR检测第41-42页
  1.9 测序用少量质粒提取第42页
  1.10 测序PCR反应体系及反应程序第42-43页
  1.11 测序PCR产物纯化第43页
  1.12 测序胶的制备第43页
  1.13 电泳第43页
  1.14 DNAstar分析软件的使用方法第43-44页
  1.15 基因组DNA的提取第44-45页
  1.16 高、矮秆基因多态性位点的检测第45-46页
 2 结果与分析第46-53页
  2.1 矮败中国春小麦回交群体的分析第46-49页
  2.2 总RNA的检测结果第49页
  2.3 矮败中国春小麦矮秆基因同源序列的克隆第49-50页
  2.4 Rh基因与GenBank数据库中已知序列的比对第50-51页
  2.5 Rh基因与H基因氨基酸序列的比对第51-52页
  2.6 Rh基因与普通小麦中其它矮秆基因氨基酸序列的比对第52页
  2.7 Rh基因与H基因多态性位点的检测第52-53页
 3 讨论第53-58页
  3.1 基于同源序列的候选基因法克隆功能基因的可行性第53-54页
  3.2 Rh基因与普通小麦中已克隆的其它矮秆基因之间的关系第54页
  3.3 Rh基因与普通小麦中矮秆基因Rht-Dlc(Rht10)的关系第54-55页
  3.4 等位特异PCR方法在检测基因多态性位点上的有效性第55页
  3.5 提高PCR技术克隆功能基因效率的几种方法第55-58页
   3.5.1 采用梯度PCR(Gradient PCR)方法寻找引物的最适退火温度第55-56页
   3.5.2 采用热启动方法加入DNA聚合酶有效防止引物二聚体的产生第56页
   3.5.3 使用PCR反应增效剂提高GC负集区的扩增效率第56-58页
第三章 矮败中国春小麦矮秆材料BAC混合池的构建及初步筛选第58-90页
 1 材料与方法第58-74页
  1.1 材料第58-59页
  1.2 载体DNA的制备第59-66页
   1.2.1 载体DNA的分离和纯化第59-61页
   1.2.2 载体DNA酶切第61-62页
   1.2.3 载体DNA脱磷第62页
   1.2.4 载体DNA自连第62-63页
   1.2.5 载体DNA回收第63页
   1.2.6 载体DNA浓度估测及分装保存第63-64页
   1.2.7 载体脱磷效果检测第64页
   1.2.8 载体连接能力检测第64-66页
  1.3 高分子量核DNA的制备第66-67页
   1.3.1 细胞核的分离第66页
   1.3.2 胶片的制备第66-67页
   1.3.3 胶片质量的检测第67页
  1.4 部分酶切最佳酶用量的确定第67-69页
   1.4.1 胶片中大片段DNA的纯化第67页
   1.4.2 非目的片段的去除第67-68页
   1.4.3 部分酶切最佳酶用量的确定第68-69页
  1.5 大片段DNA的大量酶切第69-70页
  1.6 酶切DNA片段的第一次选择第70-71页
  1.7 大片段DNA的第二次选择第71页
  1.8 大片段DNA与载体DNA的连接第71页
  1.9 连接产物的转化第71-72页
  1.10 重组克隆的分析第72页
  1.11 BAC混合池的构建第72-73页
  1.12 BAC混合池的检测第73页
   1.12.1 平均插入片段大小和空载率的检测第73页
   1.12.2 BAC克隆稳定性的检测第73页
  1.13 PCR方法筛选BAC混合池第73-74页
   1.13.1 对BAC混合池的筛选第73页
   1,13.2 对单克隆的筛选第73-74页
   1.13.3 阳性克隆的酶切鉴定第74页
 2 结果与分析第74-85页
  2.1 BAC载体DNA的制备第74-78页
   2.1.1 闭环载体DNA的酶切第74-75页
   2.1.2 脱磷后线性载体DNA的回收第75-76页
   2.1.3 回收后载体DNA的脱磷效果检测第76-77页
   2.1.4 回收后载体DNA与BamHⅠ酶切的入DNA连接效果检测第77-78页
  2.2 矮败中国春小麦中矮秆材料大片段DNA的制备第78-81页
   2.2.1 大片段DNA胶片质量的检测及浓度估测第78-79页
   2.2.2 部分酶切确定最佳酶用量第79-80页
   2.2.3 酶切后DNA片段的二次选择第80-81页
   2.2.4 二次选择后大片段DNA浓度的估测第81页
  2.3 矮秆材料BAC混合池的构建第81-83页
   2.3.1 大片段DNA与载体DNA的大量连接、转化及BAC混合池的构建第81-82页
   2.3.2 BAC克隆平均插入片段的估测第82-83页
   2.3.3 BAC克隆稳定性检测第83页
  2.4 BAC混合池的筛选及阳性克隆的鉴定第83-85页
   2.4.1 BAC混合池的初步筛选及阳性克隆的获得第83页
   2.4.2 阳性克隆的初步鉴定第83-85页
 3 讨论第85-90页
  3.1 BAC载体的选择及载体DNA的制备第85-86页
  3.2 影响大片段DNA的几个重要因素第86-87页
  3.3 在超大基因组物种中构建BAC文库的策略第87-89页
  3.4 关于筛选BAC混合池的方法第89-90页
全文结论第90-92页
参考文献第92-110页
附录1第110-111页
附录2第111-112页
附录3第112-118页
致谢第118-119页
作者简历第119页

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